5-N, N-二乙氨基-2-(吡啶-2'-亚氨甲基)苯酚的合成及其对Zn2+的识别

钟克利 邓隆隆 郭佳 张强 侯淑华 边延江 汤立军

引用本文: 钟克利, 邓隆隆, 郭佳, 张强, 侯淑华, 边延江, 汤立军. 5-N, N-二乙氨基-2-(吡啶-2'-亚氨甲基)苯酚的合成及其对Zn2+的识别[J]. 化学通报, 2018, 81(12): 1110-1114, 1120. shu
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5-N, N-二乙氨基-2-(吡啶-2'-亚氨甲基)苯酚的合成及其对Zn2+的识别

    通讯作者: 汤立军 男, 教授, 主要从事荧光分子探针的合成与应用研究, E-mail:ljtang@bhu.edu.cn
  • 基金项目:

    辽宁省自然科学基金项目(20170540019)、国家自然科学基金项目(21304009,21476029,U1608222)和辽宁省博士科研启动基金(20170520416)资助

摘要: 本文利用2-氨基吡啶与4-N,N-二乙氨基水杨醛反应合成了5-N,N-二乙胺基-2-(吡啶-2’-亚氨甲基)苯酚(探针L),并对其结构进行了表征。在DMSO/Tris(体积比6:4,pH=7.4)溶液中,探针L高选择性荧光“关-开”识别Zn2+,在365nm紫外灯照射下,由无荧光变成蓝色荧光。实验表明,探针L与Zn2+的结合比为1:1,结合常数为2.6×103 L/mol,检测限为9.39×10-7 mol/L,pH适用范围为7~11,并可检测水样中的Zn2+

English

  • 人类健康问题与体内金属离子含量有着密不可分的联系。锌是除铁之外人体内含量第二多的元素[1, 2],Zn2+能调节基因表达,参与细胞凋亡,同时也是RNA和DNA聚合酶的组成部分[3, 4]。Zn2+在基因转录、DNA合成、金属酶调节、神经信号传递和细胞新陈代谢等多种生物过程中起着重要作用[5~7],是人体中不可缺少的重要元素。近年来,由于含锌污染物过量排放,对环境危害越来越大,对人类健康也造成巨大威胁。人体内积累较高浓度的Zn2+会引起阿尔茨海默症、帕金森病、糖尿病、免疫系统受损、婴儿腹泻等[8~11]。因此,Zn2+检测备受人们的关注。在众多检测方法中,荧光法由于操作简便,可实时监测受到人们的青睐。近期,基于水杨醛[12]、喹啉[13]、芘[14]、香豆素[15, 16]、萘二甲酰亚胺[17~19]、荧光素[20]、若丹明[21]、氟硼荧染料[22]和卟啉[23~25]等荧光团作为荧光传导信号检测Zn2+已有大量报道。其中多数荧光探针具有良好的选择性和较高的灵敏度,也可应用于生物体系进行荧光成像[26]。但是,部分探针分子仍然存在合成路线较长、识别位点不明、只能在纯溶剂中检测等缺点,限制了这些荧光探针的进一步应用[27~30]。因此,开发合成简单、经济实用的荧光探针分子仍然具有重要意义。

    本文利用2-氨基吡啶和4-N, N-二乙氨基水杨醛通过一步反应合成了一种席夫碱类荧光探针L(图式 1),该探针对Zn2+具有专一的选择性和较高的灵敏度,合成方法简单,产率较高,成本较低,并且能在实际水样中检测Zn2+

    Scheme 1

    Scheme 1.  探针L合成路线
    Scheme 1.  Synthesis route of probe L

    400MHz核磁共振谱仪(美国Agilent公司);970CRT荧光分光光度计(上海三科仪器有限公司)。本实验所用试剂均为市售分析纯级。2-氨基吡啶(上海阿拉丁生化科技股份有限公司),4-N, N-二乙氨基水杨醛(萨思化学技术(上海)有限公司),石油醚、乙酸乙酯、二氯甲烷(自天津永大化学试剂有限公司),二甲基亚砜(DMSO,天津市光复精细化工研究所)。柱色谱所用硅胶(100~200目)购自青岛裕名化工厂,实验用水为去离子水。

    取250mL圆底烧瓶洗净烘干,加入1.933g(10.0mmol)4-N, N-二乙氨基水杨醛、0.943g(10.0mmol)2-氨基吡啶、40mL乙醇溶液和5滴乙酸,摇匀,充分溶解后搅拌回流6h。结束后旋蒸出乙醇,柱层析纯化(洗脱液:石油醚/乙酸乙酯体积比25:1)得到2.116g化合物L(产率78.6%)。熔点97.6~99.8℃,1H NMR(400MHz,DMSO-d6)δ:13.83(s,1H),9.22(s,1H),8.44(d,J=4.0Hz,1H),7.82(td,J=8.0、1.6Hz,1H),7.41(d,J=8.8Hz,1H),7.26(d,J=8.0Hz,1H),7.24~7.17(m,1H),6.33(d,J=8.8Hz,1H),6.06(d,J=1.6Hz,1H),3.40(q,J=7.0Hz,4H),1.12(t,J=7.0Hz,6H)。13C NMR(101MHz,DMSO-d6) δ:165.17,161.97,157.99,152.73,149.16,139.15,135.70,121.62,118.88,108.78,104.89,97.13,44.43,13.01。

    1.3.1   Tris-HCl缓冲溶液

    称取0.605g三(羟甲基)氨基甲烷(Tris),放入500mL烧杯中,用少量的去离子水溶解后,然后用10%的盐酸调节pH为7.4,最后定容到500mL容量瓶中,即得到1×10-2mol/L Tris-HCl缓冲溶液。

    1.3.2   探针L标准溶液

    称取6.7mg探针L用DMSO溶解后转入25mL容量瓶中,定容至刻度线,摇匀,得到1×10-3 mol/L溶液,再用移液器吸取1mL置于100mL容量瓶中,用DMSO:Tris=6:4(体积比,下同)溶液定容至刻度线,摇匀,配制成1×10-5mol/L探针L溶液。

    1.3.3   各种金属离子溶液

    以Zn2+为例:准确称量68.15mg氯化锌,用去离子水溶解后转入10mL容量瓶中,再用去离子水标定至刻度线,摇匀,配成5×10-2mol/L溶液。其他阳离子(Hg2+、Pb2+、Sr2+、Ba2+、Cd2+、Ni2+、Cu2+、Co2+、Fe2+、Mn2+、Na+、Ag+、Al3+、Fe3+、Mg2+、K+、Cr3+)一般用硝酸盐或氯化物配制,均配成5×10-2mol/L的溶液。

    1.4.1   探针L对各金属离子的选择性实验

    用5mL移液器取2mL 1×10-5mol/L的探针L溶液分别加入19个离心管中,再依次加入20μL浓度为5×10-2mol/L的Zn2+、Hg2+、Pb2+、Sr2+、Ba2+、Cd2+、Ni2+、Cu2+、Co2+、Fe2+、Mn2+、Na+、Ag+、Al3+、Mg2+、K+、Fe3+、Cr3+等18种离子的溶液(剩余一个离心管作为空白),摇匀。用荧光分光光度计记录其荧光光谱变化(灵敏度为2,Ex缝宽为5nm,Em缝宽为30nm)。

    1.4.2   探针L对Zn2+的荧光滴定实验

    将Zn2+配制成浓度为0.5~50×10-3 mol/L的溶液。根据Zn2+是探针L的0~50倍计算,加入不同体积的金属离子溶液,配制成不同浓度的样品,摇匀,记录荧光光谱变化。

    1.4.3   探针L对金属离子的抗干扰实验

    以Cu2+为例,用移液器量取20μL 5×10-2mol/L的Cu2+溶液加入到2mL 1×10-5mol/L探针L的溶液中,再加入20μL Zn2+溶液摇匀,静置片刻,记录其荧光光谱变化。其他金属离子均与此相同。

    1.4.4   pH对探针L荧光光谱影响实验

    分别用1mol/L的NaOH和1mol/L的HCl调节DMSO:Tris=6:4溶液的pH依次为2,3,4,5,…,12,13,用移液器分别取2mL加入到24个离心管中(分成两组),然后量取20μL 5×10-2mol/L的Zn2+加入其中一组,再量取1×10-5mol/L的探针L溶液20μL加入两组中,摇匀。用荧光分光光度计记录荧光光谱变化。

    用2-氨基吡啶和4-N,N-二乙氨基水杨醛通过一步反应即可合成探针L,合成简单,产率较高。从图 11H NMR谱可看出,δ 13.83处是羟基上的氢的化学位移峰,δ 9.22处为碳氮双键上的氢的化学位移峰,δ 8.44处是吡啶环上N原子邻位上的氢的化学位移峰,δ 7.82、7.26、6.06处分别为羟基对位、间位、邻位上的氢的化学位移峰,δ 7.41、7.20、6.33处为吡啶环上其余的氢的化学位移峰,δ 3.40处为亚甲基上的氢的化学位移峰,δ 1.12处为甲基上的氢的峰。此外,由13C NMR可看出有14组峰(图 2),与化合物L分子中的碳数相同,且化学位移值匹配,进一步证实成功合成了目标分子L

    图 1

    图 1.  探针L的1H NMR谱
    Figure 1.  1H NMR spectrum of probe L

    图 2

    图 2.  探针L的13C NMR谱
    Figure 2.  13C NMR spectrum of probe L

    首先测试了探针L的荧光性质。探针L的DMSO/Tris(6:4,pH=7.4)缓冲溶液在384nm波长的光激发下,470nm处有微弱的荧光。向缓冲溶液中加入5×10-4 mol/L Zn2+溶液后,470nm处荧光强度显著增强(增强15倍,图 3),体系由无荧光变成蓝色强荧光(图 3内插图)。而向探针L溶液中分别加入其他阳离子,如Hg2+、Pb2+、Sr2+、Ba2+、Cd2+、Ni2+、Cu2+、Co2+、Fe2+、Mn2+、Na+、Ag+、Al3+、Mg2+、K+、Fe3+、Cr3+等,荧光强度均无明显变化,这表明探针L对Zn2+有很高的选择性。

    图 3

    图 3.  探针L(1×10-5mol/L)在DMSO/Tris(6:4,pH 7.4)溶液中加入各种阳离子后荧光光谱的变化(λex=384nm);内插图:在365nm紫外灯照射下,探针L及加Zn2+后的颜色变化
    Figure 3.  Fluorescence spectra of probe L(1×10-5mol/L) in DMSO/Tris (6:4, pH7.4) buffer upon addition of various metal cations (λex=384nm); Inset: The color changes of probe L without and with Zn2+ under a portable UV lamp at 365nm excitation

    图 4是探针L的DMSO/Tris(6:4,pH=7.4)溶液荧光强度随Zn2+浓度变化情况。当加入不同浓度(0~50×10-5 mol/L)的Zn2+时,探针L在470nm处的荧光强度随Zn2+浓度的增加而逐渐增强,当Zn2+浓度为5×10-4mol/L时荧光强度达到最强,说明Zn2+浓度50倍达到饱和。同时,我们观察到Zn2+浓度在1.8~3.3×10-4 mol/L范围内荧光强度与Zn2+浓度有很好的线性关系(图 5),并计算得到斜率K。另外,测试了12个平行样的荧光强度,根据公式∑(Xi-X)2=(X1-X)2 + (X2-X)2 +……+ (Xn-X)2求出平方差的总和(Xi为每次测量探针本身荧光强度值,X为荧光强度平均值,n为测试次数,n大于等于11),然后根据公式S=[∑(Xi-X)2/(n-1)]0.5求出S,再根据检测限公式3S/K,求出检测限为9.39×10-7mol/L。上述结果表明探针L可定量检测Zn2+,且具有较高的灵敏度。

    图 4

    图 4.  探针L的DMSO/Tris (6:4,pH 7.4)溶液中加入不同浓度(0~50×10-5 mol/L)的Zn2+后L(1×10-5mol/L)的荧光发射变化
    Figure 4.  Fluorescence emission change of L(1×10-5mol/L) upon addition different amounts of Zn2+ (0~50×10-5 mol/L) in DMSO/Tris (6:4, pH 7.4) buffer

    图 5

    图 5.  L在DMSO/Tris (6:4,pH 7.4)缓冲液中的发射强度与Zn2+浓度的校准曲线
    Figure 5.  Standard calibration curve of the emission intensity of L against Zn2+ concentrations in DMSO/Tris (6:4, pH=7.4) buffer

    为了验证探针L检测Zn2+的实用性,我们考察了pH对探针L识别Zn2+的影响。以pH为横坐标、荧光强度为纵坐标作图得到图 6可看出,在pH为2~13范围内,探针L均具有较弱的荧光强度,而在pH为7~11范围内,加入Zn2+后能引起荧光明显增强,表明探针L可在中性或弱碱条件下检测Zn2+,具有潜在的应用价值。

    图 6

    图 6.  L和L+Zn2+在不同pH下的荧光强度变化(λem=470 nm)
    Figure 6.  Fluorescence intensity changes of L and L+Zn2+ at the different pH (λem=470 nm)

    其他离子共存是否影响对Zn2+的识别,是探针L实际应用价值的重要参考。将探针L分别加入含其他金属离子的溶液来测定470nm处的荧光强度,结果如图 7所示,可看出只有Zn2+能引起L的荧光强度显著增强。再往各个含金属离子的L溶液中加入Zn2+时,可看出含Al3+、Cr3+、Cu2+、Fe2+、Fe3+L溶液的荧光强度没有显著升高,说明这些离子共存时对探针L识别Zn2+有一定的干扰。

    图 7

    图 7.  在470nm处,探针L(1×10-5mol/L)加入各种金属离子5×10-4mol/L及继续加入5×10-4mol/L的Zn2+后的荧光强度,激发波长为384nm
    Figure 7.  Fluorescence intensities of L (1×10-5mol/L) in the presence of various metal ions (5×10-4mol/L, black) and additional Zn2+ (5×10-4mol/L, red). Intensity was recorded at 470 nm, excitation at 384 nm

    为了测定探针L与Zn2+的化学计量比,进行了Job’s polt实验,结果如图 8所示。从图中可看出,荧光强度随L比例的增加先增强后降低,在摩尔数比为0.5时出现拐点,表明探针L与Zn2+形成的络合物是1:1结合的。此外,我们利用1:1的希尔方程进行线性拟合,得到拟合相关系数R2=0.99288,计算出探针L与Zn2+的结合常数为Ka=2.6×103 L·mol-1, 从而进一步证明探针L与Zn2+是1:1结合的。

    图 8

    图 8.  L与Zn2+的Job plot曲线,L和Zn2+的总浓度为5×10-5mol/L
    Figure 8.  Job plot of L and Zn2+, the total concentration of L and Zn2+ is 5×10-5 mol/L

    为了确定探针L与Zn2+的结合模式,我们利用B3LYP/LANL2DZ混合泛函和6-311G基组函数对结合的稳定构型进行密度泛函理论计算[31],发现受体L中两个N原子和酚羟基的氧原子共同与1个Zn2+络合,形成稳定结构(图 9),且所形成的结构中两个芳香环几乎在同一平面上。由此可知,受体L自身由于C=N异构化导致激发态发生非辐射能量转移使荧光猝灭。与Zn2+结合后抑制了C=N异构化,并使分子共平面,增加了分子刚性,从而使荧光显著增强[32]

    图 9

    图 9.  密度泛函理论计算得到L与Zn2+结合的最优结构
    Figure 9.  Calculated energy-minimized structure of L with Zn2+

    为了开发探针L的潜在应用价值,考察了L在实际水样中检测Zn2+的可行性。取实验室的自来水、渤海大学听林湖水、锦州凌河区的小凌河水,分别用CH2Cl2萃取3次,水层煮沸15min后过滤[33]。用上述水样配制1×10-5mol/L的L的DMSO/H2O溶液,在溶液中依次加入0~50×10-5mol/L的Zn2+,放置30min后测试470nm处的荧光强度。如图 10所示,在5×10-5~40×10-5 mol/L范围内L溶液的荧光强度与Zn2+浓度成正比,良好的线性关系说明探针L可在5×10-5~40×10-5mol/L范围内定量检测Zn2+

    图 10

    图 10.  三个水样中L的荧光强度与Zn2+浓度(5×10-5~40 ×10-5mol/L)的线性关系
    Figure 10.  Linear relation of fluorescence intensities of L (1×10-5mol/L) upon addition of Zn2+ (5×10-5~ 40 ×10-5mol/L) in three natural water samples

    本文利用2--氨基吡啶与4-N, N-二乙氨基水杨醛一步合成荧光探针L。该探针在DMSO/Tris(6:4,1×10-5mol/L,pH=7.4)溶液中于中性或弱碱性条件下可选择性识别Zn2+,检测限可达9.39×10-7 mol/L,并可在实际水样中定量检测Zn2+

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  • Scheme 1  探针L合成路线

    Scheme 1  Synthesis route of probe L

    图 1  探针L的1H NMR谱

    Figure 1  1H NMR spectrum of probe L

    图 2  探针L的13C NMR谱

    Figure 2  13C NMR spectrum of probe L

    图 3  探针L(1×10-5mol/L)在DMSO/Tris(6:4,pH 7.4)溶液中加入各种阳离子后荧光光谱的变化(λex=384nm);内插图:在365nm紫外灯照射下,探针L及加Zn2+后的颜色变化

    Figure 3  Fluorescence spectra of probe L(1×10-5mol/L) in DMSO/Tris (6:4, pH7.4) buffer upon addition of various metal cations (λex=384nm); Inset: The color changes of probe L without and with Zn2+ under a portable UV lamp at 365nm excitation

    图 4  探针L的DMSO/Tris (6:4,pH 7.4)溶液中加入不同浓度(0~50×10-5 mol/L)的Zn2+后L(1×10-5mol/L)的荧光发射变化

    Figure 4  Fluorescence emission change of L(1×10-5mol/L) upon addition different amounts of Zn2+ (0~50×10-5 mol/L) in DMSO/Tris (6:4, pH 7.4) buffer

    图 5  L在DMSO/Tris (6:4,pH 7.4)缓冲液中的发射强度与Zn2+浓度的校准曲线

    Figure 5  Standard calibration curve of the emission intensity of L against Zn2+ concentrations in DMSO/Tris (6:4, pH=7.4) buffer

    图 6  L和L+Zn2+在不同pH下的荧光强度变化(λem=470 nm)

    Figure 6  Fluorescence intensity changes of L and L+Zn2+ at the different pH (λem=470 nm)

    图 7  在470nm处,探针L(1×10-5mol/L)加入各种金属离子5×10-4mol/L及继续加入5×10-4mol/L的Zn2+后的荧光强度,激发波长为384nm

    Figure 7  Fluorescence intensities of L (1×10-5mol/L) in the presence of various metal ions (5×10-4mol/L, black) and additional Zn2+ (5×10-4mol/L, red). Intensity was recorded at 470 nm, excitation at 384 nm

    图 8  L与Zn2+的Job plot曲线,L和Zn2+的总浓度为5×10-5mol/L

    Figure 8  Job plot of L and Zn2+, the total concentration of L and Zn2+ is 5×10-5 mol/L

    图 9  密度泛函理论计算得到L与Zn2+结合的最优结构

    Figure 9  Calculated energy-minimized structure of L with Zn2+

    图 10  三个水样中L的荧光强度与Zn2+浓度(5×10-5~40 ×10-5mol/L)的线性关系

    Figure 10  Linear relation of fluorescence intensities of L (1×10-5mol/L) upon addition of Zn2+ (5×10-5~ 40 ×10-5mol/L) in three natural water samples

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  • 发布日期:  2018-12-18
  • 收稿日期:  2018-07-25
  • 接受日期:  2018-09-05
通讯作者: 陈斌, bchen63@163.com
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    沈阳化工大学材料科学与工程学院 沈阳 110142

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