

Citation: Wang Ruixianga, Lai Xiaojinga, Qiu Guanyinsheng, Liu Jinbiao. Recent Advances in Reaction-Based Excited State Intramolecular Proton Transfer (ESIPT) Fluorescence Probe[J]. Chinese Journal of Organic Chemistry, 2019, 39(4): 952-960. doi: 10.6023/cjoc201811006

基于激发态分子内质子转移(ESIPT)原理的反应型荧光探针研究进展
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关键词:
- 激发态分子内质子转移(ESIPT)
- / 反应型
- / 荧光探针
English
Recent Advances in Reaction-Based Excited State Intramolecular Proton Transfer (ESIPT) Fluorescence Probe
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荧光探针技术是借助探针分子与目标物结合, 从而改变探针分子的荧光性质, 最终实现对目标物质检测识别的一种分析方法, 具有灵敏度高、检测限低、选择性好和操作简便等优点[1~4].荧光探针的设计原理有多种, 如光诱导电子转移[5]、分子内电荷转移[6, 7]、荧光共振能量转移[8~11]、激发态分子内质子转移(excited-state intramolecular proton transfer, ESIPT)[12]和聚集诱导发光[13, 14]等.其中, 基于ESIPT机理的荧光探针具有发光强、斯托克斯位移较大、光稳定性好等优异特性, 表现出良好的传感性能.近来, 涌现出了大量有关ESIPT的理论和实验研究.
一般来说, 如果分子的结构包含氢键供体(OH或NH2)和氢键受体(=N—和C=O), 那么这类分子就能发生分子内质子转移, 显示出ESIPT荧光.最常见的具有ESIPT典型结构的化合物有2-(2ꞌ-羟基苯基)苯并噁唑(HBO)、2-(2ꞌ-羟基苯基)苯并噻唑(HBT)、2-(2ꞌ-羟基苯基)苯并咪唑(HBI)以及3-羟基黄酮衍生物等(图 1). ESIPT过程是荧光分子受光激发后, 激发态分子内部质子给体与相邻的质子受体之间发生质子转移.在激发态下质子氢发生转移, 导致分子内共轭结构发生极大的变化, 光谱发生红移, 从而可以观察到一个很明显的Stokes位移[15].如图 2所示, 以HBT为例, 烯醇式异构体E (enol-form)受到激发, 跃迁至单线激发态E*, 随即快速发生分子内质子转移, 得到酮式异构体单线激发态K*, 最终以发射荧光的方式返回基态K (keto-form).相比E与E*之间的能量间隙, K*与K之间的能量间隙更小.由此造成电子从激发态K*回落至基态K时发出的荧光波长更长, 即展现出更大的Stokes位移.
图 1
图 2
反应型荧光探针是基于荧光分子与目标物质发生化学反应, 导致探针化学结构改变, 从而使得探针的荧光性质发生改变, 最终达到对目标物质检测的目的[16].反应型荧光探针相较于传统荧光探针, 具有对目标物质识别性更高、识别监测信息响应灵敏且时间较久等优点.目前, 基于ESIPT机理设计的反应型荧光探针已成为研究热点, 被广泛用于阴离子、金属离子、中性分子和生物酶等物质的检测.鉴于此, 本文将针对基于ESIPT机理的反应型荧光探针研究进展进行总结和评述.
1. 阴离子荧光探针
1.1 F-荧光探针
氟离子在化学、生物、医学、环境和材料等领域都有重要作用.适量的氟对于人体有益, 但是过量的氟摄入, 将导致氟骨症等多种疾病.因此, 对于氟离子的检测识别一直是分析化学家们关注的重点.氟原子的电负性较大, 并且F-与硅具有极高的亲和力. Yang等[17]以2-(2ꞌ-羟基苯基)-苯并咪唑作为底物, 与叔丁基二甲基氯硅烷(TBS-Cl)反应合成荧光探针1.当溶液中存在F-时, F-可以快速断开Si—O键, 即使得探针1上的TBS基团脱除, 从而恢复ESIPT结构, 展现出较大Stokes位移荧光(Eq. 1).基于HBI核心骨架的探针1, 能专一性地识别F-, 操作方便, 效果显著.
(1) 基于类似的思路, 一系列氟离子荧光探针相继被开发, 例如基于喹啉骨架的探针2[18]、HBT骨架的探针3~5[19]、咪唑骨架的探针6[22](图 3).由于氟离子对Si—O键的选择性断开, 使得此类荧光探针具有很高的专一性.如表 1所示, 基于ESIPT型荧光探针, 在脱除硅保护基后, 展现出较大的Stokes位移值.此外, 探针3和4还被应用于细胞成像, 具有较好的应用前景.
图 3
表 1
Probe λex/nm λem/nm Limit of detection 1 310 454 0.19 μmol•L-1 2 335 520 1.0 μmol•L-1 3 330 477 6.5 μmol•L-1 4 360 586 10.18 μmol•L-1 5 350 566 ≈0.1 mg/L 6 302 448 2.64 μmol•L-1 由于F-能够与活泼氢形成很稳定的氢键, 基于此, Saravanan等[23]设计合成了成苯并硒二唑基二芳基胺(7, TBS-HN), 作为一种高选择性、高灵敏度的F-荧光探针7.当有F-存在时, 探针7拔除二芳胺上的氢, 导致ESIPT过程将被抑制, 最终使得探针7的荧光性质发生巨大变化, 实现对的F-的选择性检测(Eq. 2).有意思的是, 在F-存在下, 探针的颜色由红色转变为墨绿色, 肉眼清晰可见, 并且对于其它常见阴离子的选择性很高.
(2) 1.2 CN-荧光探针
CN-具有很强的亲核性能, 能够对羰基或者亚胺进行加成. Goswami等[24]应用CN-的亲核性, 设计开发了HBT类荧光探针8, 该探针含有两个醛基, 能够与亲核性的CN-发生加成反应, 改变探针的电子结构; 同时, 由于CN-具有很强的氢键作用力, 能拔除羟基上的氢, 进而抑制探针的ESIPT效应(Eq. 3).通过以上两种作用, 探针的荧光发生明显变化, 荧光颜色从绿色转变成蓝色.该文作者通过核磁共振氢谱, 验证了CN-确实与探针发生了加成, 使得醛基氢转变为醇羟基氢.
(3) Jiang等[25]以3, 5-二叔丁基-2-羟基苯甲醛和2-氨基苯酚作为底物, 通过简单的醛-胺缩合反应获得探针9.探针9在二甲亚砜(DMSO)溶液中不具荧光性, 加入CN-后, 与亚胺发生亲核加成, 随即发生亲核环化脱去CN-得到HBO类荧光产物(Scheme 1). CN-在该策略中起到催化剂的作用, 得到具有ESIPT效应的荧光产物, 从而实现了CN-的识别.该类荧光探针具有很好的专一性, 对于其它常见的阴离子都无响应.
图式 1
1.3 SO32-/HSO3-荧光探针
Yang等[26]以2-(2ꞌ-羟基苯基)苯并噻唑作为原料, 合成出探针10.探针10含有不饱和羰基结构, 当SO32-存在时, 不饱碳碳双键受到SO32-的加成, 进而得到HBT类荧光产物, 最终实现SO32-的选择性识别(Eq. 4).探针10的荧光可从橙色转变为蓝色, 并且被成功应用于活体细胞中SO32-的荧光检测.
(4) 2016年, Feng等[27]制备了一种新型的HBT-半花菁混合物荧光探针11.与传统的ESIPT染料HBT相比, 这种杂化体具有更大的红移发射, 可以用作比色和比率荧光探针来检测亚硫酸氢盐.该探针的检测机理为, HSO3-对双键进行加成, 破坏了整个大共轭结构, 使得荧光发射峰波长从610 nm转变为485 nm (Eq. 5).在水溶液中具有高选择性和高灵敏度, 对HSO3-的检测极限约56 nmol•L-1, 线性范围为0~25 μmol•L-1.该探针的实际应用价值已通过对食物样品和活细胞中的HSO3-的检测试验结果得到证明.
(5) 1.4 S2-/H2S荧光探针
Goswami等[28]为实现快速检测S2-/H2S, 以ESIPT原理为基础, 设计合成了HBT类探针12.在S2-/H2S存在下, 探针12出现一个较大的红移发射.该文作者指出, 探针甲酰基首先受到S2-的亲核进攻, 随后巯基与酯基发生分子内酯交换, 得到典型的HBT荧光分子(Scheme 2).探针还被成功应用于酵母细胞的荧光成像.仅由探针处理过的细胞无荧光, 在经过硫化钠和探针一起处理过20 min后, 细胞荧光成像明显.
图式 2
Yang等[29]基于HBT骨架的ESIPT原理, 开发了H2S比率荧光探针13.该探针仅在374 nm处显示烯醇类荧光发射; 然而, 在中性溶液中引入H2S后, 通过串联亲核取代/环化反应除去探针的保护基团, 使得探针恢复ESIPT效应, 导致374 nm处的发射带减少, 而478 nm处新的荧光峰不断增加(Scheme 3).在478和374 nm处的荧光强度比值, 随着H2S浓度增加在0.5~10μmol•L-1范围内线性增大.探针13对H2S响应具有优于其他常见阴离子和生物硫醇的选择性.
图式 3
3-羟基黄酮也是一类常见的荧光染料. Feng等[30]基于ESIPT原理, 以水杨醛与对二甲氨基苯甲醛为原料合成中间体4'-二甲基氨基-3-羟基黄酮, 继续与1-氟-2, 4-二硝基苯反应合成荧光探针14, 用于在生物血清和模拟废水样品中检测H2S.作用机理如Scheme 4所示, HS-能与探针14发生亲核取代, 2, 4-二硝基苯基离去, ESIPT效应得到释放, 最终荧光在538 nm处荧光明显增强, Stokes位移值可达120 nm.
Scheme 4
1.5 高碘酸根离子荧光探针
高碘酸根离子被广泛应用于有机氧化过程中, 其在环境和食品中的检测是很有价值的. Huang等[31]设计合成了首例高碘酸根离子的比率荧光探针15.如Scheme 5所示, 高碘酸根能选择性氧化邻二醇, 之后在牛血清蛋白(BSA)作用下, 脱除保护基团, 最终得到HBT型荧光产物.该荧光技术有助于更好地解释高碘酸盐相关的生物和化学过程, 可以作为公共卫生、食品安全和环境检测的有效工具.
Scheme 5
2. 金属阳离子荧光探针
2.1 Hg2+荧光探针
Doroshenko等[32]报道了一类基于3-羟基黄酮骨架的荧光探针用于Hg2+的检测, 但是有趣的是, 该检测机理是通过Hg2+与探针进行配位阻断ESIPT效应, 使得荧光增强. 2011年, Ahn等[33]基于ESIPT原理设计合成了HBT骨架化合物16, 作为Hg2+的荧光探针(Eq. 6).由于Hg2+能够促进烯基醚键的断裂, 进而获得ESIPT典型荧光结构; 并且相对其他金属离子, 选择性高.往探针16体系中加入Hg2+, 探针的荧光发射峰从420 nm漂移至500 nm, 荧光显色灵敏.该探针可在水溶液中进行, 对Hg2+的检测限度可达20 ng/L.
(6) 此外, Hg2+还能选择性脱除二硫代缩醛保护基.基于此机理, 2017年Chang等[34]设计合成了一类二噻烷衍生物染料作为反应型Hg2+荧光探针17 (Eq. 7).探针17在乙腈水溶液中对Hg2+具有明显的荧光信号, 并且以柠檬酸盐作为掩蔽剂和缓冲剂, 能够有效地去除Cu2+离子的干扰响应.该响应过程可在15 min内完成, 并且检测限可达2.0×10-7 mol•L-1.
(7) 2.2 Cu2+荧光探针
通常, Cu2+能够使得荧光团发生荧光淬灭. 2015年, Tang等[35]报道了一类3-羟基黄酮类“关-开-关”型荧光探针, 可以实现铝离子和铜离子的串联检测.当铝离子与探针发生络合时, 荧光得到增强; 随后加入铜离子, 荧光淬灭, 从而实现了两种离子的串联检测.同年, Han等[36]报道了一种基于ESIPT机制的新型反应型Cu2+荧光探针18.该探针含有2-吡啶甲酸酯, 能够选择性地被Cu2+促进酯水解过程的发生, 从而使得HBT的ESIPT效应得到释放(Eq. 8).该探针被成功应用于HeLa细胞中:当HeLa与探针(5 μmol•L-1)孵化0.5 h后, 加入氯化铜(15 μmol•L-1)溶液, 细胞荧光明显增强, 展现出较好的应用前景.
(8) 2.3 Pd2+荧光探针
相比烯基醚键, 炔丙基或烯丙基醚键可被Pd2+选择性断开. 2012年, Bai等[37]设计了一类基于3-羟基黄酮骨架的荧光探针19.该探针3-位羟基通过炔丙基修饰, 导致ESIPT效应受阻; 在加入Pd2+后, Pd2+选择性地断开炔丙基醚键, 使得探针恢复ESIPT (Eq. 9).该探针可以实现各种氧化态钯的检测, 检测限可达87 nmol•L-1.类似地利用丙烯基与Pd2+选择性反应, 可脱除烯丙基, 使得探针恢复ESIPT结构, 荧光增强. Xu等[38]设计了一类HBT骨架化合物作为Pd2+反应型荧光探针.由于Pd2+作为Suzuki反应的催化剂, 被广泛应用于药物分子的合成中.因此, Pd2+在药物分子中的残留检测, 非常有必要.通过将该探针制成试纸, 对Suzuki反应产物进行检测, 发现经过一次柱层析后的产物仍然有Pd2+的残留.当进行三次纯化后, 产物中的Pd2+可降低到10 mg/L以下.
(9) 2017年, Liu等[39]基于3-羟基黄酮骨架设计合成了探针20.与探针19不同的是, 其保护基为烯丙氧羰基, 能够与钯进行选择性反应.并且, 该探针可用于检测所有典型氧化态(0, +2, +4)的钯物种(Eq. 10).在室温下, 探针20在大约1.5 min内显示对钯物质的比率荧光响应, 具有较低的检测限(9.0 nmol•L-1).与其他报道的钯探针相比, 具有检测条件温和、检测耗时短和较低的检测限等优点.
(10) 2.4 其他金属离子荧光探针
除了发生共价键的断裂, 金属离子可与探针进行络合, 阻碍探针的ESIPT效应的同时, 荧光得到增强.此类探针通常有较大的斯托克斯位移, 但是当ESIPT效应发生阻碍时, 斯托克斯位移减小, 发射峰明显蓝移.例如, Zhang等[40]报道了一类水溶性嘧啶并苯并咪唑的荧光探针21, 用于Al3+的可视化检测.研究发现, 在检测体系中加入Al3+后, 荧光光谱强度增强约20倍, 激发峰由350 nm红移到405 nm, 发射峰由520 nm蓝移到505 nm. Gupta等[41]也报道了一例Zn2+荧光探针22, 机理也是通过离子络合, 使得荧光团的ESIPT发生阻断, 但是发生络合后, 荧光团的刚性结构使得荧光大大增加, 并出现发射峰的明显蓝移.
3. 氧化物荧光探针
活性氧(ROS)在神经退行性疾病中起着重要作用, 同时在生物系统和自然界中也广泛存在.基于ROS在健康和环境中扮演的重要角色, ROS的检测吸引了很多关注. 2013年, Churchill等[42]基于ESIPT原理设计合成了两种反应型荧光探针23和24, 实现了对超氧化物KO2的荧光检测(Eq. 11).在超氧根离子存在下, 探针中的醚键发生水解, 使得HBT结构恢复, 荧光大大增强.两类探针选择性均很好, 并且观察到荧光红移达85 nm, 荧光强度增大约60倍, 对超氧根离子的检测限可达6.38×10-5 mol•L-1.
(11) Xue等[43]基于ESIPT原理, 以HBO作为荧光团设计合成了含硼酸酯识别基团的H2O2荧光探针25 (Eq. 12). HBO类似物是典型的荧光化合物, 表现出独特的聚集诱导发射增强现象.此外, 探针含包含一长脂肪链, 目的是在含有表面活性剂体系下, 发生共聚, 在获得ESIPT效应的同时, 还观测到明显的聚集诱导发光.在双氧水存在下, 硼酸酯苄基保护基团被氧化离去, 得到HBO骨架, 荧光最大发射峰从405 nm移动到510 nm, 红移明显.
(12) 利用类似的机理, Liu等[44]设计合成了基于HBT骨架的探针26, 用于荧光检测过氧化苯甲酰.虽然双氧水也能氧化硼酸酯, 但是该探针能够选择性地区分双氧水和过氧苯甲酰.推测可能因为硼酸酯的位阻效应, 以及检测体系中的乙醇降低了双氧化水的氧化性.该探针还被应用于HeLa细胞中过氧苯甲酰的荧光检测.
4. 生物小分子及酶荧光探针
4.1 半胱氨酸探针
氨基酸小分子以及生物酶在生命过程中起到非常关键的作用, 因此通过荧光手段对这些物质进行检测, 进而了解生命过程是非常有意义的. 2014年Pang等[45]报告了一种简单易用的荧光探针27, 用于生物学重要的半胱氨酸(Cys)的快速特异性检测.该探针以在可见光下可发生ESIPT的染料3-羟基黄酮作为荧光团, 并以一个丙烯酸酯基团作为ESIPT阻断剂以及识别单元.丙烯酸酯部分可以在温和条件下与Cys在水溶液中发生特异性反应, 且快速地实现裂解, 从而导致探针27恢复ESIPT过程(Eq. 13).重要的是, 该探针能够将Cys、高半胱氨酸以及谷胱甘肽进行有效区分.对Cys的检测限为1 μmol•L-1, 在活细胞中被成功应用于细胞内Cys的生物成像, 表明该探针27具有很大的生物学应用潜力.
(13) 基于类似检测机理, Feng等[46]也设计合成了3-羟基黄酮骨架探针28, 用于特异性检测Cys. Li等[47]以3-(4, 5-二苯基-1H-咪唑-2-基)萘-2-酚为ESIPT荧光团, 设计合成了Cys探针29, 同样带有丙烯酸酯识别基团.
此外, 甲酰基也被用作Cys的识别基团. Goswami等[48]以HBI为骨架设计合成了探针30, 用以检测水以及细胞中的Cys和高半胱氨酸.其反应机理以检测Cys为例, 主要是羰基氧与羟基氢能形成氢键, 从而阻碍了ESIPT效应; 在Cys或高半胱氨酸与甲酰基缩合成噻唑环后, ESIPT效应得到恢复(Eq. 14).探针荧光发射峰从436 nm红移到521 nm.
(14) 4.2 磷酸酯酶探针
酪氨酸磷酸酶(PTP)在细胞调节和信号转导通路中起着关键作用, 包括癌症、糖尿病和阿尔茨海默氏症在内的一些疾病都与磷酸酶的异常活性有关, 因此, PTP的监测在生物医学研究中具有重要意义. Kim等[49]以HBT作为底物, 设计合成了PTP荧光探针31.该荧光探针含有磷酸酯键, 能够与磷酸酶MKP-6特异性结合, 并使探针上磷酸基团脱去恢复ESIPT结构, 最终实现MKP-6的荧光检测(Eq. 15).研究发现, 在26种人酪氨酸磷酸酶中, 仅有MKP-6能够实现该探针的磷酸酯基水解, 选择性高.
类似的, Fan等[50]以HBI为骨架, 设计合成了含有磷酸基团的荧光探针32, 用以检测碱性磷酸酶(ALP).
(15) 该探针对于ALP的检出限为1.3 U/L. 2015年, Zeng等[51]也报道了以3-羟基黄酮为核心骨架的探针33, 用以检测ALP, 检出限可达0.032 U/L.对于在生物实验中测定ALP水平是足够有效的, 因为对于健康的成年人来说, 血液中的ALP水平在46~190 U/L之间.
溶酶体酶负责细胞内各种蛋白质、脂质和碳水化合物的消化, 其功能失调会导致许多遗传性溶酶体存储障碍.例如, 溶酶体酯酶的失效会导致沃尔曼病, 其症状包括腹泻、腹部肿胀、肝脏肿大、体重无法增加等. Liu等[52]基于ESIPT原理构建了溶酶体酯酶荧光探针34.该探针基于水杨酰肼荧光基团, 其与酯酶反应, 乙酰基脱除, ESIPT效应恢复, 荧光大幅度增强(Eq. 16).该探针具有AIE和ESIPT的特点, 具有溶酶体特异性靶向、高浓度不自淬灭、大斯托克斯移位、低细胞毒性和对酯酶的高度特异性.它也被用于原位监测溶酶体酯酶活性和跟踪活细胞中的溶酶体运动, 这对于由溶酶体酯酶缺乏引起的相关疾病的诊断具有很大的潜力.
(16) 5. 其他分子荧光探针
一氧化氮(NO)存在于心血管系统、免疫系统和神经系统中, 在生理和病理过程中都起着至关重要的作用.许多疾病与体内NO的失调有关, 如癌症、缺血、感染性休克、炎症、神经变性等. Zhu等[53]设计合成了用于检测硝酰基(HNO)的ESIPT型荧光探针35.该探针含有3-羟基黄酮荧光团, 并通过酯基相连的识别受体——二苯基膦苯甲酰基, 其与HNO反应形成氮杂叶立德, 随后氮杂叶立德与羰基发生分子内亲核环化, 导致荧光团3-羟基黄酮的释放(Eq. 17).结果表明, 探针35对HNO的选择性响应优于其他生物还原剂, 能在0~20 μmol• L-1范围内定量检测HNO, 水溶液检测限为1.28×10-7 mol•L-1.该探针被成功应用于复杂生物样品(血清)2~20 μmol•L-1范围内的HNO检测, 其检测限为3.96× 10-7 mol•L-1, 具有较高实际应用价值.
(17) 肼在化工、医药、农业等行业中常用作催化剂、缓蚀剂、纺织染料、医药中间体等.肼具有高毒性, 吸入后可影响人和动物的肺、肝、脾、甲状腺等. Goswami等[54]基于ESIPT原理构建肼荧光探针36, 其羟基被γ-溴代丁酰基保护, 从而导致HBT部分的ESIPT阻断.当加入肼时, 肼取代溴原子, 随后与酯基环化脱除保护基, 从而恢复ESIPT, 实现肼的荧光检测(Eq. 18).基于类似的机理, Zhu等[55]设计合成了基于3-羟基黄酮骨架的肼荧光探针37, 并将其用于在HeLa细胞中肼的检测.
(17) 2014年, Pang等[56]设计合成了一类3-乙酰氧基黄酮类荧光探针38用于肼的检测.他们通过对羟基进行酯化修饰, 阻碍荧光团的ESIPT效应; 在肼存在下, 肼能够使得酯键发生断裂, 从而使得ESIPT效应恢复, 荧光大大增强(Eq. 19).探针具有优良的选择性, 可以区分其他含氮试剂, 如三乙胺、羟胺、尿素、吡咯烷等.并且该探针还被应用到斑马鱼中的活体成像, 表现出活体分析检测肼的潜力.最近, Ju等[57]也报道了一例基于3-羟基黄酮骨架的用于检测肼的荧光探针39.其中, 修饰基团上2位的氯和4位的硝基均为拉电子基团, 有利于肼解反应发生.探针能够应用于活细胞中肼的微量检测, 展现其在生物活体分析方面潜在的应用价值.
(19) 6. 结论与展望
综上可见, 基于ESIPT原理的反应型荧光探针, 由于其检测灵敏、选择性好、荧光发射红移明显以及Stokes位移大等优点, 已经得到很大发展.然而现有的ESIPT反应型荧光探针仍存在诸多不足: (1)目前开发的ESIPT反应型荧光探针, 发射波长谱段主要为400~600 nm; 而较短的发射波长导致荧光在生命体内穿透性较弱, 不利于在生物体内进行监测. (2)在质子性溶剂中的ESIPT的过程易受溶质-溶剂分子间氢键影响, 其在水溶液中质子转移能力比较弱, 因此不利于ESIPT反应型荧光探针在活体细胞内的检测.开发具有灵敏度高、选择性高、光稳定性高、细胞膜通透性好等性能的ESIPT反应型荧光探针, 尤其是一些生物酶的检测以及在疾病诊断中的应用, 将成为研究热点.
-
-
[1]
张惠敏, 吴彦城, 尤嘉宜, 曹梁, 丁沙, 蒋凯, 汪朝阳, 有机化学, 2016, 36, 2559. http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract345638.shtmlZhang, H.-M.; Wu, Y.-C.; You, J.-Y.; Cao, L.; Ding, C.; Jiang, K.; Wang, Z.-Y. Chin. J. Org. Chem. 2016, 36, 2559 (in Chinese). http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract345638.shtml
-
[2]
徐勤超, 金灿, 朱雪慧, 邢国文, 有机化学, 2014, 34, 647. http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract343722.shtmlXu, Q.-C.; Jin, C.; Zhu, X.-H.; Xing, G.-W. Chin. J. Org. Chem. 2014, 34, 647 (in Chinese). http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract343722.shtml
-
[3]
李杨洁, 吕子奇, 刘敏, 邢国文, 有机化学, 2016, 36, 962. http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract345379.shtmlLi, Y.-J.; Lv, Z.-Q.; Liu, M.; Xing, G.-W. Chin. J. Org. Chem. 2016, 36, 962 (in Chinese). http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract345379.shtml
-
[4]
张聪, 高云玲, 化工进展, 2016, 35, 3288.Zhang, C.; Gao, Y.-L. Chin. Ind. Eng. Prog. 2016, 35, 3288 (in Chinese).
-
[5]
Ooyama, Y.; Matsugasako, A.; Oka, K.; Nagano, T.; Sumomogi, M.; Komaguchi, K.; Image, I.; Harima, Y. Chem. Commun. 2011, 47, 4448. doi: 10.1039/c1cc10470e
-
[6]
Liu, Y.; Han, M.; Zhang, H.-Y.; Yang, L.-X.; Jiang, W. Org. Lett. 2008, 10, 2873. doi: 10.1021/ol801048t
-
[7]
Bryce, M. R. Adv. Mater. 2010, 11, 11. http://cn.bing.com/academic/profile?id=39ed88516440ff9c19f3fa80b5717be6&encoded=0&v=paper_preview&mkt=zh-cn
-
[8]
Medintz, I. L.; Clapp, A. R.; Brunel, F. M.; Tiefenbrunn, T.; Uyeda, H. T.; Chang, E. L.; Deschamps, J. R.; Dawson, P. E.; Mattoussi, H. Nat. Mater. 2006, 5, 581. doi: 10.1038/nmat1676
-
[9]
Marras, S. A.; Kramer, F. R.; Tyagi, S. Nucleic Acids Res. 2002, 30, e122. doi: 10.1093/nar/gnf121
-
[10]
Clapp, A. R.; Medintz, I. L.; Mauro, J. M.; Fisher, B. R.; Bawendi, M. G.; Mattoussi, H. J. Am. Chem. Soc. 2004, 126, 301. doi: 10.1021/ja037088b
-
[11]
Berezin, M. Y.; Achilefu. S. Chem. Rev. 2010, 110, 2641. doi: 10.1021/cr900343z
-
[12]
Kwon, J. E.; Park, S. Y. Adv. Mater. 2011, 23, 3615. doi: 10.1002/adma.v23.32
-
[13]
Hong, Y.; Lam, J. W.; Tang, B. Z. Chem. Soc. Rev. 2011, 40, 5361. doi: 10.1039/c1cs15113d
-
[14]
Mei, J.; Hong, Y.; Lam, J. W.; Qin, A.; Tang, Y.; Tang, B. Z. Adv. Mater. 2014, 26, 5429. doi: 10.1002/adma.201401356
-
[15]
蒋凯, 曹梁, 郝志峰, 陈美燕, 程洁銮, 李晓, 肖萍, 陈亮, 汪朝阳, 有机化学, 2017, 37, 2221. http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract346113.shtmlJiang, K.; Cao, L.; Hao, Z.-F.; Chen, M.-Y.; Chen, J.-R.; Li, X.; Xiao, P.; Chen, L.; Wang, Z.-Y. Chin. J. Org. Chem. 2017, 37, 2221 (in Chinese). http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract346113.shtml
-
[16]
Cho, D. G.; Sessler, J. L. Chem. Soc. Rev. 2009, 38, 1647. doi: 10.1039/b804436h
-
[17]
Yang, X.-F.; Qi, H.; Wang, L.; Su, Z.; Wang, G. Talanta 2009, 80, 92. doi: 10.1016/j.talanta.2009.06.030
-
[18]
Bao, Y.; Liu, B.; Wang, H.; Tian, J.; Bai, R. Chem. Commun. 2011, 47, 3957. doi: 10.1039/c1cc00034a
-
[19]
Goswami, S.; Das, A. K.; Manna, A.; Maity, A. K.; Fun, H. K.; Quah, C. K.; Saha, P. Tetrahedron Lett. 2014, 55, 2633. doi: 10.1016/j.tetlet.2014.03.003
-
[20]
Mahapatra, A. K.; Mondal, S.; Manna, S. K.; Maiti, K.; Maji, R.; Ali, S. S.; Mandal, D.; Uddin, M. R.; Mandal, S. Supramol. Chem. 2016, 28, 693. doi: 10.1080/10610278.2015.1122195
-
[21]
Hu, R.; Feng, J.; Hu, D.; Wang, S.; Li, S.; Li, Y.; Yang, G. Angew. Chem., Int. Ed. 2010, 122. 5035. doi: 10.1002/ange.v122:29
-
[22]
Dhanunjayarao, K.; Mukundam, V.; Venkatasubbaiah, K. Sens. Actuators, B 2016, 232, 175. doi: 10.1016/j.snb.2016.03.090
-
[23]
Saravanan, C.; Easwaramoorthi, S.; Hsiow, C. Y.; Wang, K.; Hayashi, M.; Wang, L. Org. Lett. 2014, 16, 354. doi: 10.1021/ol403082p
-
[24]
Goswami, S.; Manna, A.; Paul, S.; Das, A. K.; Aich, K.; Nandi, P. K. Chem. Commun. 2013, 49, 2912. doi: 10.1039/c3cc39256b
-
[25]
Liang, C.; Jiang, S. Analyst 2017, 142, 4825. doi: 10.1039/C7AN01479A
-
[26]
Geng, L.; Yang, X. F.; Zhong, Y.; Li, Z.; Li, H. Dyes Pigm. 2015. 12, 213. http://www.infona.pl/resource/bwmeta1.element.elsevier-a750b688-895d-3d52-9e3d-3d9df9717805/tab/summary
-
[27]
Zhang, H.; Huang, Z.; Feng, G. Anal. Chim. Acta 2016, 920, 72. doi: 10.1016/j.aca.2016.03.027
-
[28]
Goswami, S.; Manna, A.; Mondal, M.; Sarkar, D. RSC Adv. 2014, 4, 62639. doi: 10.1039/C4RA12537A
-
[29]
Huang, Q.; Yang, X. F.; Li, H. Dyes Pigm. 2013, 99, 871. doi: 10.1016/j.dyepig.2013.07.033
-
[30]
Liu, Y.; Feng, G. A. Org. Biomol. Chem. 2014, 12, 438. doi: 10.1039/C3OB42052C
-
[31]
Huang, C.; Jia, T.; Yu, C.; Zhang, A.; Jia, N. Biosens. Bioelectron. 2015, 63, 513. doi: 10.1016/j.bios.2014.08.005
-
[32]
Svechkarev, D.; Dereka, B.; Doroshenko, A. J. Phys. Chem. A 2011, 115, 4223. doi: 10.1021/jp110974n
-
[33]
Santra, M.; Roy, B.; Ahn, K. H. Org. Lett. 2011, 13, 3422. doi: 10.1021/ol2011693
-
[34]
Chang, I. J.; Hwang, K. S.; Chang, S. K. Dyes Pigm. 2017, 137, 69. doi: 10.1016/j.dyepig.2016.09.058
-
[35]
Zhao, J.; Zhao, Y.; Xu, S.; Luo, N.; Tang, R. Inorg. Chim. Acta 2015, 438, 105. doi: 10.1016/j.ica.2015.09.007
-
[36]
Yang, C.; Chen, Y.; Wu, K.; Wei, T.; Wang, J.; Zhang, S.; Han, Y. Anal. Methods 2015, 7, 3327. doi: 10.1039/C5AY00224A
-
[37]
Liu, B.; Wang, H.; Wang, T.; Bao, Y.; Du, F.; Tian, J.; Li, Q.; Bai, R. Chem. Commun. 2012, 48, 2867. doi: 10.1039/c2cc17677g
-
[38]
Cui, L.; Zhu, W.; Xu, Y.; Qian, X. Anal. Chim. Acta 2013, 786, 139. doi: 10.1016/j.aca.2013.05.011
-
[39]
Luo, W.; Li, J.; Liu, W. Org. Biomol. Chem. 2017. 15. 5846. doi: 10.1039/C7OB01189J
-
[40]
马拓, 张瑾, 刘龙珠, 贺云, 张尊听, 有机化学, 2014, 34, 1780. http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract344483.shtmlTuo, M.; Jin, Z.; Liu, L.; Yun, H.; Zhang, Z. Chin. J. Org. Chem. 2014, 34, 1780 (in Chinese). http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract344483.shtml
-
[41]
Gupta, V. K.; Mergu, N.; Singh, A. K. Sens. Actuators, B 2014, 202, 674. doi: 10.1016/j.snb.2014.05.133
-
[42]
Murale, D. P.; Kim, H.; Choi, W. S.; Churchill, D. G. Org. Lett. 2013, 15, 3946. doi: 10.1021/ol4017222
-
[43]
Li, G.; Zhu, D.; Liu, Q.; Xue, L.; Jiang, H. Org. Lett. 2013, 15, 924. doi: 10.1021/ol4000845
-
[44]
Wang, L.; Zang, Q.; Chen, W.; Hao, Y.; Liu, Y. N.; Li, J. RSC Adv. 2013, 3, 8674. doi: 10.1039/c3ra41209a
-
[45]
Liu, B.; Wang, J.; Zhang, G.; Bai, R.; Pang, Y. ACS Appl. Mater. Interfaces 2014, 6, 4402. doi: 10.1021/am500102s
-
[46]
Liu, Y.; Yu, D.; Ding, S.; Xiao, Q.; Guo, J.; Feng, G. ACS Appl. Mater. Interfaces 2014, 6, 17543. doi: 10.1021/am505501d
-
[47]
Zhang, Y.; Wang, J.-H.; Zheng, W.; Chen, T.; Tong, Q.-X.; Li, D. J. Mater. Chem. B 2014, 2, 4159. doi: 10.1039/C4TB00190G
-
[48]
Goswami, S.; Manna, A.; Paul, S.; Das, A. K.; Nandi, P. K.; Maity, A. K.; Saha, P. Tetrahedron Lett. 2014, 55, 490. doi: 10.1016/j.tetlet.2013.11.055
-
[49]
Kim, T. I.; Kang, H. J.; Han, G.; Chung, S. J.; Kim, Y. Chem. Commun. 2009, 5895.
-
[50]
Fan, C.; Luo, S.; Qi, H. Luminescence 2016, 31, 423. doi: 10.1002/bio.v31.2
-
[51]
Hu, Q.; Zeng, F.; Yu, C.; Wu, S. Sens. Actuators, B 2015, 220, 720. doi: 10.1016/j.snb.2015.05.111
-
[52]
Gao, M.; Hu, Q.; Feng, G.; Tang, B.-Z.; Liu, B. J. Mater. Chem. B 2014, 2, 3438. doi: 10.1039/C4TB00345D
-
[53]
Jin, X.; Sun, X.; Di, X.; Zhang, X.; Huang, H.; Liu, J.; Ji, P.; Zhu, H. Sens. Actuators, B 2016, 224, 209. doi: 10.1016/j.snb.2015.09.072
-
[54]
Goswami, S.; Das, S.; Aich, K.; Pakhira, B.; Panja, S.; Mukherjee, S. K.; Sarkar, S. Org. Lett. 2013, 15, 5412. doi: 10.1021/ol4026759
-
[55]
Jin, X.; Liu, C.; Wang, X., Huang, H.; Zhang, X.; Zhu, H. Sens. Actuators, B 2015, 216, 141. doi: 10.1016/j.snb.2015.03.088
-
[56]
Liu, B.; Liu, Q.; Shah, M.; Wang, J.; Zhang, G.; Pang, Y. Sens. Actuators, B 2014, 202, 194. doi: 10.1016/j.snb.2014.05.010
-
[57]
鞠志宇, 舒朋华, 谢智宇, 蒋雨晴, 陶伟杰, 许志红, 有机化学, 2019, 39, 697. http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract346882.shtmlJu, Z.; Shu, P.; Xie, Z.; Jiang, Y.; Tao, W. Chin. J. Org. Chem. 2019, 39, 697 (in Chinese). http://sioc-journal.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract346882.shtml
-
[1]
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表 1 探针1~6相关检测性质比较
Table 1. Comparison of the detection properties of probes 1~6
Probe λex/nm λem/nm Limit of detection 1 310 454 0.19 μmol•L-1 2 335 520 1.0 μmol•L-1 3 330 477 6.5 μmol•L-1 4 360 586 10.18 μmol•L-1 5 350 566 ≈0.1 mg/L 6 302 448 2.64 μmol•L-1 -

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