不同介质中氰根传感器的研究进展

曲文娟 房虎 黄青 张有明 林奇 姚虹 魏太保

引用本文: 曲文娟, 房虎, 黄青, 张有明, 林奇, 姚虹, 魏太保. 不同介质中氰根传感器的研究进展[J]. 有机化学, 2019, 39(5): 1226-1243. doi: 10.6023/cjoc201810018 shu
Citation:  Qu Wenjuan, Fang Hu, Huang Qing, Zhang Youming, Lin Qi, Yao Hong, Wei Taibao. Research Progress of Cyanide Sensors in Different Medium[J]. Chinese Journal of Organic Chemistry, 2019, 39(5): 1226-1243. doi: 10.6023/cjoc201810018 shu

不同介质中氰根传感器的研究进展

    通讯作者: 曲文娟, quwenjuanlz@163.com; 张有明, zhangnwnu@126.com; 魏太保, weitaibao@126.com
  • 基金项目:

    国家自然科学基金(Nos.21661028,21662031,21574104)资助项目

摘要: 氰根离子对于哺乳动物来说具有很强的毒性,因为它会影响人体许多正常的功能,比如血管、视觉、中枢神经、心脏、内分泌和代谢系统.此外,含氰的盐类化合物仍然在人类的生产生活中广泛使用,特别是在电镀和塑料制造业、黄金和白银开采、制革工业、冶金等方面,从而导致了环境的污染.因此,人工合成的氰根选择性受体或荧光传感器在阴离子识别领域引起了广泛的关注.由于化学传感器具有合成方法简单、廉价、响应速度快,以及与氰根反应前后比色和/或荧光变化等优点,因此在过去的数十年中,被广大科研工作者深入研究.根据在不同介质中的氰根离子响应,本文从四个方面总结了2010年以来氰根离子传感器的研究进展:(1)纯有机相中的氰根离子识别,(2)含水介质中的氰根离子识别,(3)纯水相中的氰根离子识别,(4)固相中的氰根离子识别.这些传感器针对在溶液中和固体材料中氰根离子的检测,以及对氰根离子裸眼检测的研究,从而实现了在环境以及食物样品中方便、快捷地实时检测氰根离子.

English

  • 阴离子在自然界和生物体中无处不在, 因此光学活性阴离子受体的发展吸引了很多化学家的注意, 因为这些受体在材料科学、环境科学和生物化学领域具有潜在的应用价值[1].由于阴离子的大小和形状的变化很大, 所以选择性阴离子受体的设计是一项极具挑战性的任务, 但它仍然是超分子化学研究的一个重要领域[27].从生理学上来说, 诸如Cl-, AcO-, CN-, F-, HSO4-这些都广泛存在于生活和环境系统中, 并且以其在人体中的各种重要角色而被熟知[8~11].然而, 当它们的浓度超过通常允许的限度时, 就会造成严重的有害影响[12].而在有害的阴离子中, 氰根离子最受关注.氰根离子(CN-)被认为是人体最致命的, 它可以影响人体的多种功能, 包括视觉、血管、心脏、中枢神经、内分泌和代谢系统[1319].氰化物可以通过皮肤、胃肠道和肺部吸收, 引起痉挛、呕吐、意识丧失, 最终死亡[20, 21].它能够破坏线粒体中存在的电子传递系统, 导致猝死[22, 23].它的毒性来自于它在细胞色素c氧化酶中与铁结合的能力, 干扰电子运输, 导致缺氧[24~28].

    尽管有一些不利的影响, 但从积极的方面来看, 氰离子仍然是一种非常重要的化学试剂, 在许多化学过程中都是工业应用的, 如黄金开采、电镀、首饰制作、X射线胶片复原、制革和冶金[29~31].然而, 水溶性的氰化物盐是最致命的污染和中毒的药物[32, 33].世界健康组织(WHO)允许饮用水中氰化物的最大污染量不超过1.9 µmol•L-1[34].到目前为止, 大多数化学计量仪检测氰根离子的方法为: (1)基于氢键结合[35, 36], (2)与路易斯酸络合[37], (3)时间门荧光[38], (4)量子点[39], (5)金纳米粒子[40], (6)基于Al2O3薄膜模型的化学传感[41], (7)与金属结合的染料结构单元[42], (8)共价键的形成[43~46].目前用于氰根测定的方法, 如电位滴定法和常规滴定法, 即耗时又需要有熟练的操作技巧.因此, 为了在生产生活中能够方便地使用并且快速地检测, 已经研制出了很多氰根选择性传感器.这些荧光化学传感器提供了非常有吸引力的特性, 如灵敏度高、选择性强、视觉检测和光学成像等[47].

    一般情况下, 科研工作者按照图 1所示的三种不同的识别形式来设计氰根离子的光学传感器. (a)最受欢迎的策略是识别位点和信号报告单元通过连接臂连接在一起的传感器.在这种情况下, 氰根与识别位点的相互作用会导致信号报告单元的颜色或荧光发生变化. (b)此外, 还会使用基于配位化合物的置换方法.在这些传感器中, 氰根离子的引入导致了没有配位的指示剂的光谱行为产生. (c)第三种测定氰根离子的方法被称为化学剂量法.这些类型的传感器依赖于一些特殊反应, 一般来说是与氰根发生不可逆的化学反应.

    图 1

    图 1.  三种氰根传感器的方法
    Figure 1.  Three approaches for chemosensors

    (a) Chemosensor bearing a signaling subunit as well as a binding site, (b) displacement approach, and (c) chemodosimeter

    在氰根传感器发展的初期, 由于大部分传感器都是有机化合物, 所以科研工作者未考虑研究在水溶液中识别氰根离子的传感器, 因此很多传感器分子都是在纯有机相中进行氰根离子识别的.然而, 考虑到氰根离子一般都存在于自然环境中, 并且检测水溶液中的氰根离子成为一个重要的话题, 所以在之后的工作中, 科研工作者倾向于研究在含水介质或纯水相中氰根离子的识别过程, 合成出了很多水溶性的传感器分子.同时, 固相传感器具有方便携带等优点, 因此, 有少部分人会研究氰根离子识别的固相材料.在本文中, 我们将这几类传感器分类探讨, 使人们更快捷地理解这些传感器的特点, 对今后氰根离子传感器的研究提供一定的帮助.

    2011年Wang等[48]设计、合成了新型的基于丙酸纤维素的荧光化学传感器1, 用来在N, N-二甲基甲酰胺(DMF)中检测CN-.通过在双氰乙烯基和阴离子之间的亲核加成反应, 1对CN-展示出优于其他常见阴离子的选择性, 并且可以通过裸眼检测和荧光双通道识别氰根.与它的模板化合物相比, 1成功地展示了其对CN-荧光增强的响应, 它的最低检测限低至14 nmol/L, 这是我们所知道的基于丙酸纤维素的荧光传感的最佳结果之一.通过较低的检测极限进一步确认了1比模板化合物有更广泛的线性范围, 更好的竞争选择性, 以及1更快速的响应.

    2012年Guo等[49]报道了一个基于香豆素与异柠檬酸脱氢酶的化合物2, 它能够在CH3CN中作为一种被激活的迈克尔加成型传感器, 用于检测CN-.传感器2对CN-的比色和比率荧光响应是由于CN-与双活性的受体分子发生迈克尔加成反应, 从而阻止了分子内的电荷转移过程.传感器在室温下显示了对CN-的快速反应, 当只有2 equiv.的CN-存在时即达到了最大比率荧光信号.此外, 其他阴离子在相同条件下紫外和荧光信号都没有发生变化, 这表明该传感器对CN-具有很高的选择性.

    图 2

    图 2.  化合物2识别的机制和可见光下溶液照片
    Figure 2.  Recognition mechanism of compound 2 and the solution image in visible light

    2012年Wang等[50]报道了一种能够连续识别两种阴离子的传感器3, 在四氢呋喃(THF)中, 传感器3展现出对F-和CN-的高选择性比色响应.作者提出了阴离子接力识别的新概念(ARR), 为阴离子的连续识别提供了行之有效的方法:两个阴离子的检测不需要依赖于两个不同的探针.巧妙地利用一种探针的固有反应能力, 可以在一种串联方式中实现双重识别目的.

    图 3

    图 3.  化合物3识别的机制和荧光下溶液照片
    Figure 3.  Recognition mechanism of compound 3 and the solution image under the UV-lamp

    2012年Schmittel等[51]合成了两种基于1, 10-邻二氮杂菲-4, 7-二甲醛钌配合物45, 两种配合物都能够在CH3CN中紫外和磷光双通道识别CN-.在加入CN-后能够裸眼观察到溶液在可见光下由橙红色变为黄色, 在发光状态下溶液由橙色变成红色.在室温条件下, 45对CN-的响应速度很快, 只需要理论配比的量就能在15 s内完成反应.计算的最低检测限说明这两个传感器能够在其他离子干扰下检测微摩尔级以下低浓度的CN-.由于该配合物具有两个反应位点, 所以能够通过紫外吸收光谱、磷光光谱和核磁滴定中观察到反应逐步发生, 并且作者通过理论计算验证了反应是逐步发生的.

    2013年Boucekkine等[52]研究了一种高选择性和高灵敏度的化学传感器6, 用于在CH2Cl2中检测微摩尔浓度的CN-离子.当加入CN-之后溶液发出很强的磷光, 并且对CN-的选择性要比其它离子高很多.这种传感器设计策略可能有助于开发更高效的“关-开”磷光传感器.

    图 4

    图 4.  化合物6的合成过程
    Figure 4.  Synthetic progress of compound 6

    2013年Kim等[53]用4-硝基异硫氰酸酯与二(2-吡啶甲基)胺合成了一个受体分子7, 这个分子在质子性溶剂(如EtOH)中对CN-展现出明显优于其它阴离子的选择性响应.此外, 它还通过颜色的变化将CN-与其他阴离子区分开来.它的检测极限远远低于世界卫生组织规定的饮用水中CN-含量.然而, 在诸如乙腈等非质子溶剂中, 由于强碱性阴离子的非选择性去质子化, 导致了CN-的选择性较差.这些结果表明, 受体分子7与CN-不同的相互作用机理取决于不同的溶剂.

    图 5

    图 5.  化合物7识别CN-的示意图
    Figure 5.  Schematic diagram of compound 7 recogniting CN-

    2013年Hua等[54]设计合成了两种新型的基于5, 10-己二基二氢吩嗪的化学传感器89.其中传感器8中连有两个二氰乙烯基作为结合位点, 传感器9中连有一个二氰乙烯基和一个醛基, 两个分子中都有吸电子基. 8展现出分子内电荷转移(ICT)过程的吸收波长和发射波长分别在545和730 nm处.所以当CN-在CH3CN中与8的两侧发生反应后, 它展现出了一个ICT阻碍的过程, 从而实现了荧光“开-关”的响应.在传感器9中, 由于是单边的ICT识别过程, 导致9对CN-展现出显著地比色和近红外的荧光响应.这两种传感器在其他离子干扰的情况下, 都对CN-有高灵敏度和高选择性, 可以用裸眼观察到明显的光学信号变化.

    2014年Yin等[55]在EtOH中将2-羟基-1, 3, 5-苯三甲醛与1-甲基-2, 3, 3-三甲基-3H-吲哚通过加热回流的方法合成了传感器10.它的识别能力是在DMSO中进行的, 当向10中加入多种阴离子后, 只有氰根能够引起荧光由蓝色-绿色的变化.它的识别机理是CN-与吲哚上极化的C=N发生亲核加成反应, 从而破坏了吲哚和苯环之间的π-共轭体系.该传感器在2 min之内就能与CN-反应完全, 最低检测限为45 nmol/L.

    图 6

    图 6.  化合物10识别CN-的机理
    Figure 6.  Recognition mechanism of compound 10

    2015年Wu等[56]报道了一种简单的传感器11, 并对其在CH3CN溶液中阳离子和阴离子的传感性能进行了研究.传感器11可以通过氢键的相互作用比色识别F-, 并且通过加成反应紫外-荧光双通道选择性地响应CN-.传感器11对F-和CN-离子的最低检测限分别为0.28和0.41.传感器11能够作为潜在的F-和CN-传感工具.

    图 7

    图 7.  化合物11的合成过程
    Figure 7.  Synthetic progress of compound 11

    2015年Xing等[57]合成了一个凭借分子内电荷转移(ICT)机理的近红外传感器12.该传感器能够在CH3CN中双比率紫外-荧光检测CN-.特别是, 该方法可以通过检测市售苦杏仁样品中的微量CN-来追踪测定其β-葡萄糖苷酶的含量.

    图 8

    图 8.  化合物12识别CN-的机理
    Figure 8.  Recognition mechanism of compound 12

    2016年Reddy等[58]合成了一个新型的能够发出磷光的铱(Ⅲ)配合物13.作者根据众所周知的生成氰醇的反应, 将配合物13用于在CH3CN中检测CN-, 并且通过单晶和X射线衍射证明了它的固态结构.值得注意的是, 铱(Ⅲ)配合物在固态状态下仍然有很强的红色磷光, 并且在乙腈溶液中也有红色光发出.作者通过紫外和磷光验证了CN-与铱(Ⅲ)配合物的结合方式.当加入2 equiv. CN-之后, 溶液明显地从橙色变到了黄色, 并且发出的磷光由红色变成蓝色.作为识别实验的重要一部分, 基于配合物13的试纸也被制作出来用于检测CN-.

    图 9

    图 9.  化合物13识别CN-的机理
    Figure 9.  Recognition mechanism of compound 13

    2016年Volpi[59]报道了一个在茚三酮溶液中检测苦杏仁中HCN的传感器14.这一过程是基于将HCN从切碎的苦杏仁种子中吸收到茚三酮或氨水铜配合物溶液中.作者还利用定性实验证明了在苦杏仁种子中存在HCN, 并将HCN还原形成一种有趣的混合价铜氨基氰化复合物Cu3(NH3)4(CN)4.

    图 10

    图 10.  化合物14识别CN-的机理
    Figure 10.  Recognition mechanism of compound 14

    2016年Liu等[60]设计并合成了一种新颖的双位点控制分子内电荷转移-光诱导电子转移-荧光共振能量转移(ICT-PET-FRET)的传感器15, 它在THF中显示出对CN-的高选择性荧光和比色识别.传感器15中NH和CH通过延长的骨架连接在一起, 同时, 它们被用作两个结合位点, 并且通过光诱导电子转移和分子内电荷转移控制了萘二甲酰亚胺的荧光.基于传感器15的检测试纸证明了在固态下仍然对CN-展现出良好的响应.

    图 11

    图 11.  化合物15的合成过程
    Figure 11.  Synthetic progress of compound 15

    2016年Wang等[61]合成了四苯基二烯(TPE)和二酮吡咯(DPP)两种共轭结构1617, 并且研究了它们的荧光性质.化合物1617无论在溶液中还是固态下都发出很强的荧光.其中17在THF中展示出对CN-的高选择性和特异性响应, 使溶液颜色由粉色变为无色, 发射出的亮红色磷光猝灭.它的荧光最低检测限是0.3 µmol•L-1, 远低于世界卫生组织规定的1.9 µmol•L-1的标准.

    2017年Yin等[62]设计了一种新型的发红光材料18, 它是基于异环己烯酮骨架的典型非对称π-共轭结构, 能在EtOH中与CN-发生亲核加成反应, 并且没有受到其他阴离子的干扰.在该传感器中以基于异环己烯酮骨架的醛为信号报告基团, 这是第一次将这类骨架作为信号报告基团, 用作化学传感器来检测其它物质.

    图 12

    图 12.  化合物18识别CN-的机理
    Figure 12.  Recognition mechanism of compound 18

    此外, 作者还证明了这种独特的传感器在活细胞中检测CN-的能力.

    2011年Li等[63]合成了一个铱(Ⅲ)配合物19, 它的纳米晶体证明了它能够在DMF/H2O (V:V=9:1)溶液中和活的海拉细胞中用作CN-比率传感器.通过抑制纳米晶体中的荧光共振能量转移(FRET)过程, 配合物19能够对CN-表现出明显优于其他阴离子的选择性. 0.18 μmol/L的最低检测限使配合物19能成功地检测饮用水中的CN-.此外, 通过激光扫描上转换发光显微成像(LSUCM)实验, 证明了19的纳米晶体可以作为一种用于在活细胞中实时监测CN-的比率传感器.据我们所知道的, 这个方法能够成为一个阴离子传感和生物成像研究的模板.

    图 13

    图 13.  纳米粒子19识别CN-的机理
    Figure 13.  Recognition mechanism of nanoparticle 19

    2012年Kim等[64]报道了用贝利斯-希尔曼冷凝反应将α, β-不饱和酮功能化的萘并吡喃化合物20, 被用作在DMSO/HEPES (V:V=5:5, pH=7.0)缓冲溶液中作为CN-荧光传感器.传感器对CN-显示了优于其他阴离子的选择性和灵敏度, 它通过与CN-发生迈克尔加成反应以及随后发生的一个1, 3-σ单键重排反应进行CN-识别.当加入CN-以后, 观察到明显的比率荧光变化, 达到了裸眼检测微摩尔CN-的效果.

    图 14

    图 14.  化合物20识别CN-的机理
    Figure 14.  Recognition mechanism of compound 20

    2013年Lee等[65]发现氢键促进共价修饰在小分子化学合成和检测中有着广泛的应用.作者合成了一个基于氧杂蒽的荧光传感器21, 分子内的凹面存在着多重氢键, 这些氢键紧紧地将酰基和醛基固定住.这种给体-受体间氢键的结合形式使分子内键的旋转有巨大的能量屏障, 有效地帮助分子形成巨大的凹面, 并有效地使极化的亲电性羰基被亲核的CN-进攻, 使CN-在CH3CN/HEPES (V:V=1:9, pH=7.0)缓冲溶液中发生亲核进攻.被CN-进攻加成之后, 传感器21在400 nm处有一个明显的荧光增强的现象, 并且该反应发生得非常快, 实现了实时检测CN-的效果.

    图 15

    图 15.  化合物21识别CN-的机理
    Figure 15.  Recognition mechanism of compound 21

    2013年Aprahamian等[66]合成了一个三唑吡啶盐用来在DMSO/H2O (V:V=99:1)溶液中作为高效的反应型CN-传感器22.当向传感器22中加入NaCN后, 能够观察到荧光发射强度增加了近60倍, 并且其最低检测限为0.2.当CN-与传感器22发生亲核加成反应后, 桥连的氮发生开环反应, 使光学信号发生变化, 从而展现出传感器22对CN-独特的检测性能, 作者利用密度泛函理论计算证明了这个开环反应的发生, 同时, 将该实验的反应条件进一步优化以便在实际应用中使用该方法.

    图 16

    图 16.  化合物22识别CN-的机理
    Figure 16.  Recognition mechanism of compound 22

    2014年Chen等[67]报道了一个新型的基于二氰乙烯基团的荧光传感器23, 它是基于激发态分子内电荷转移-激发态分子内质子转移(ESICT-ESIPT)两个效应偶合的体系.基于这个偶和体系, 该传感器能够在THF/ HEPES (V:V=8:2, pH=7.3)溶液中对CN-展现出特殊的选择性和灵敏性.在与CN-反应后, 能够观察到紫外吸收光谱有一个96 nm的蓝移过程, 并且用肉眼能够观察到溶液由黄色变为无色, 红色荧光猝灭.作者利用密度泛函理论计算和时间响应证明了该反应的机理.此外, 基于传感器23的试纸很容易制造且成本很低, 试纸可以被用作实用的、有效的CN-检测工具.

    图 17

    图 17.  化合物23识别CN-的机理
    Figure 17.  Recognition mechanism of compound 23

    2014年Kumar等[68]设计合成了基于六苯基苯的聚集态荧光增强活性的传感器24, 用于在H2O/EtOH (V:V=8:2)溶液中选择性检测CN-离子.通过CN-于分子中高度缺电子的酰胺发生亲核加成反应生成CN-加成产物, 导致比色和比率荧光发生变化.利用基于24的试纸检测出最低检测限为2.6 ng/cm2, 为在水介质中实时检测CN-提供了一种简单且低成本的方法.同时, 传感器24在检测CN-后继续加入三氟乙酸, 能重新释放出主体.作者将这种循环制作出一个逻辑门, 只有恰当地输入顺序才能有正确的信号输出.

    图 18

    图 18.  化合物24的合成过程
    Figure 18.  Synthetic progress of compound 24

    2014年我们课题组[69]报道了一个基于萘胺和二羟基萘甲醛的低成本荧光传感器25, 它在DMSO/HEPES (V:V=8:2, pH=7.2)溶液中荧光打开检测CN-.当用365 nm紫外灯照射时, 肉眼观察到溶液的荧光变成亮蓝色, 并且其它常见阴离子没有干扰传感器25与CN-的反应, 它的最低检测限为8.434×10-9 mol•L-1.该识别过程是通过CN-与传感器分子发生亲核加成反应, 随后又通过氢键形成了二聚体, 导致荧光增强, 并且通过FT-IR、ESI/MS和1H NMR滴定等验证了这一机理.

    图 19

    图 19.  化合物25识别CN-的机理
    Figure 19.  Recognition mechanism of compound 25

    2014年Wang等[70]报道了一个由吡咯并吡咯二酮和二氢化茚的荧光传感器26, 被用于检测水溶液中的CN-.当在传感器26的THF溶液中加入CN-的水溶液, 能发生迈克尔加成反应, 导致溶液快速地从紫色变到黄色, 紫外吸收峰也从553 nm蓝移至480 nm, 与此同时, 其它阴离子并没有导致任何变化.此外, 在484和572 nm处的磷光强度也明显的发生变化.利用荧光滴定实验计算得出其最低检测限为0.36 μmol•L-1.结果表明, 26可以作为双通道、高选择性、即时性和敏感的CN-检测工具.

    2015年Chen等[71]合成并表征了一个基于7-氮杂吲哚的低成本的分子量小的化合物27, 把1-甲基-7-氮杂吲哚上的醛基用双氰乙烯基取代来作为一个电子给体和识别位点. CN-对双氰乙烯基的亲核加成导致了荧光强度发生明显的变化, 能够在THF/HEPES (V:V=9:1, pH=7.3)溶液中比率荧光检测CN-.其中, 激发状态分子内电荷转移(ESICT)机理在传感过程中起着关键作用, 该机理得到了密度函数理论和时间相关密度函数理论计算的支持.此外, 含有传感器分子的试纸很容易被制造出来, 并为CN-离子提供了一个低成本、实用和有效的检测工具.

    图 20

    图 20.  化合物27识别CN-的机理
    Figure 20.  Recognition mechanism of compound 27

    2015年我们课题组[72]基于分子内电荷转移机理, 通过一种绿色化学的方法, 设计并合成了一种易于制作的传感器28, 该传感器在室温下DMSO/HEPES (V: V=2:8, pH=7.26)中实现了双通道即时检测CN-.通过实验表明, 传感器28通过亲核加成反应识别CN-, 并且其它阴离子的存在并没有影响到CN-的识别, 对CN-的最低检测限为2.7×10-7 mol•L-1, 满足了在生理和环境系统中检测CN-的标准.此外, 自制的基于28的试纸对CN-显示出了良好的选择性, 证明这些试纸可以作为方便和有效的CN-检测工具.

    图 21

    图 21.  化合物28识别CN-的机理
    Figure 21.  Recognition mechanism of compound 28

    2015年Chow等[73]合成并且表征了一个新型的双金属Cu-Fe配合物29, 这个配合物被证明是一个多功能的分子, 同时具有化学传感的功能.在DMF/HEPES (V:V=1:1, pH=7.4)溶液中, CN-可以将其催化-氧化, 并且导致光信号变化.研究结果表明, 配合物29能在三个方面提供良好的性能. (1)在含水体系中专门作为CN-的裸眼比色传感器; (2) CN-的最低检测限降低了大约80倍(从32到0.4 μmol/L); (3)氰化物被完全氧化, 形成了更安全的、稳定的氰酸盐离子(OCN-).这种检测性质能够被应用于检测真实水体中的CN-, 如河流、湖泊和地下水, 它对CN-有较高的回收率和良好的相对标准偏差.

    2016年我们课题组[74]设计并合成了一种新型基于柱[5]芳烃的化学传感器30, 它利用了8-羟喹啉部分作为一个结合位点和信号报告单元.通过一个新型的CN-诱导的自组装机理, 这个基于柱[5]芳烃的传感器能够在DMSO/H2O (V:V=8:2)高灵敏度和选择性的检测CN-.当将CN-加入到传感器的溶液中时, 出现了一种强烈的黄绿色荧光, 荧光的最低检测限为1.08×10-8 mol•L-1.此外, 基于传感器的试纸被制作出来, 这种化学传感器试纸是一种很好CN-检测工具.随后, 我们还对生命体系中的应用进行了研究, 该传感器也可以在发芽的土豆中检测CN-.值得一提的是, CN-诱导的自组装机理是一种新型的传感器设计方法.

    2016年Son等[75]设计和合成了两种基于萘酰亚胺的新型分子3132.在这两个分子中, 双氰乙烯基部分和氰基乙氧羰基乙烯基部分分别作为识别位点与吸电子基的萘酰亚胺环荧光团相结合.在THF/H2O (V: V=3:7)溶液中, 即使在存在其它干扰的情况下, 这两种受体都能表现出对CN-高度的灵敏性和选择性, 可以通过肉眼观察到有明显的反应信号.作者利用荧光光谱、核磁共振滴定和高分辨率质谱等技术合理地解释了这两个传感器分子识别CN-的机理.在加入CN-之后, 3132的荧光都明显增强了.与32相比, 31展现出对CN-更高的亲和性和灵敏度.

    图 22

    图 22.  化合物3132的合成过程
    Figure 22.  Synthetic progress of compounds 31 and 32

    2016年Ghosh等[76]用2-羟基萘甲醛和2, 3-二氨基顺丁烯二腈反应合成了相应的双席夫碱衍生物33.传感器33的Zn2+配合物在DMSO/H2O (V:V=7:3, pH=7.2)的三羟甲基氨基甲烷缓冲溶液中显示了与CN-的选择性结合, 其紫外-可见和荧光光谱都有显著的变化.并且由紫外光谱能够看出, 当33-Zn与CN-反应后, 会将传感器33重新释放出来. CN-33的核磁滴定证明没有反应前, 分子中的两个羟基以氢键相互作用, 之后以双齿配位基的方式相互作用.将传感器用硅胶薄层色谱法(TLC)浸泡后, 再滴加CN-, 能够看到其颜色明显的由黄色变为橙色.在环境和分析化学中, 可以利用它作为潜在的工具来检测有毒的CN-离子.传感器33可以被用作检测仓鼠幼崽的肾细胞中CN-吸收量的一种成像试剂.

    图 23

    图 23.  化合物33识别CN-的机理
    Figure 23.  Recognition mechanism of compound 33

    2016年我们课题组[77]设计并合成了一种基于咪唑并吩嗪的双通道传感器34, 传感器34可以在DMSO/ H2O (V:V=7:3)水溶液中连续检测CN-和HSO4-, 并具有较高的选择性和灵敏度.在加入了CN-的水溶液后, 直接可以看见传感器34的溶液从黄色到橙色的颜色变化, 同时, 传感器的黄色荧光被猝灭.更有趣的是, 将HSO4-加入到包含CN-的传感器水溶液后, 比色和荧光都可以恢复, 其他的阴离子不能引起类似的反应. 3434-CN分别对CN-和HSO4-的最低检测限为8.9×10-8和1.46×10-10 mol•L-1.值得注意的是, 基于传感器34的试纸具有连续响应水溶液中的CN-和HSO4-的功能, 为阴离子的连续识别提供了一种简便方法.

    图 24

    图 24.  化合物34识别CN-的机理
    Figure 24.  Recognition mechanism of compound 34

    2017年El-Shishtawy等[78]合成了一种新的吩噻嗪衍生物35, 它含有两个二氰乙烯基, 来作为两个CN-的反应位点, 并得到了充分的表征.传感器35在CH3CN/ H2O (V:V=1:1)溶液中存在一个分子内电荷转移的吸收带(494 nm)和荧光发射带(633 nm).用不同浓度的CN-离子滴定时, 吸收峰和发射峰均以一种比率的方式下降.这种CN-的光学信号改变是因为CN-与两个二氰乙烯基发生迈克尔加成反应, 把这些电子受体转化为阴离子电子给体, 从而破坏了共轭, 最终影响了化学传感器的ICT效应和荧光.结果表明, 该传感器的灵敏度高, 响应时间小于50 s, 对CN-的选择性较高, 最低检测限为3.2×10-9 mol•L-1.

    2017年Wang等[79]合成了一个三苯胺修饰的氟硼二吡咯36, 该分子在一个三苯胺中心体上连有三个2-甲酰基氟硼二吡咯基团, 在其中包含有电子给体和受体.因为分子内电子给体和受体被桥连的苯基阻碍, 所以传感器中不存在扭曲的分子内电荷转移(TICT)效应.然而, 它的发射峰可以通过增加溶剂黏度和降低溶液温度来增强, 这表明聚集诱导发射(AIE)效应是由抑制分子内发光体引起的.作者发现, 36可以作为F-和CN-的比色和荧光化学传感器, 不受任何其它阴离子的干扰.当在传感器36的THF/H2O (V:V=98:2)溶液中分别加入F-和CN-后, 能够用肉眼观察到溶液快速地由黄色变成肉色和无色. 1H NMR证明CN-和F-优先进攻氟硼二吡咯的硼中心, 而不是甲酰基部分.

    2017年Yin等[80]研究了两种新型荧光成像材料3738, 并以标准的分析工具和光谱技术对它们进行了充分地分析.在多种阴离子存在时, 传感器3738在HEPES/DMSO (V:V=1:1, pH=7.4)中都能够对CN-展现出高选择的响应.之后用1H NMR和MS证明了它们的识别机理为CN-对分子上的吲哚亲核进攻, 使溶液荧光增强. 1H NMR和MS表明, 在离子化过程中, CN-与吲哚的亲核性加成是可逆的.对于传感器的实际应用, 37可以应用于生物荧光显微镜成像技术.

    2017年我们课题组[81]设计合成了一个基于亲核加成反应过程识别CN-的化学传感器39.该传感器能够在DMSO/H2O (V:V=8:2, HEPES, pH=7.20)中单一选择性的识别CN-, 并且该过程能够从荧光明显增强表现出来, 这一过程不会受到其他共存阴离子的干扰.经过研究我们发现传感器39对CN-具有很低的检测限.此外, 通过应用性实验, 我们得出传感器39的溶液能够有效地检测樱桃核中的CN-, 基于传感器39的检测试纸能够很好的检测水溶液中的CN-.

    2011年Shiraishi等[82]合成了一种简单的共聚物40, 由N-异丙基丙烯酰胺和共轭的香豆素螺吡喃单元组成.这种共聚物可以在室温下对水中的CN-进行选择性的荧光检测.这种共聚物本身几乎没有荧光, 但当加入CN-后, 在紫外光照射下显示出强烈的蓝色荧光.荧光增强是由于CN-与螺吡喃和N-异丙基丙烯酰胺桥连的碳发生亲核加成反应, 导致π-电子在香豆素环上定域化.这种共聚物能够精确地测定低浓度的CN- (0.5 μmol•L-1).因为加热引起共聚物的聚合, 共聚物可以在高温下(>40 ℃)通过简单的离心方法从水中回收.此外, 共聚物通过简单的酸处理能重新生成, 结果显示回收后的共聚物被成功地用于进一步的CN-传感, 而不会降低灵敏度.

    图 25

    图 25.  化合物40识别CN-的机理
    Figure 25.  Recognition mechanism of compound 40

    2013年我们课题组[83]介绍了一种具有高度选择性的化学传感器41, 用酰肼部分作为结合位点和萘环部分作为荧光信号报告基团, 可以在水中瞬间选择性和高灵敏度地检测CN-.通过CN-对羰基上的碳发生亲核进攻来检测CN-, 可以通过1H NMR、13C NMR、ESI-MS和DFT计算得到证实.将CN-加入到传感器41中, 溶液颜色从无色变到黄色, 并且有蓝色的荧光产生, 这种传感过程没有被其它共存的阴离子干扰.根据荧光滴定计算出该传感器的最低检测限为2.0×10-9 mol•L-1.基于传感器41的试纸被制作出来, 可以作为一种方便、有效的CN-检测工具.

    2014年Xue等[84]合成了一种新型多功能荧光化学传感器42, 该传感器是基于柱5芳烃(WP5)和10-碘代吖啶(G)在水之间的相互作用而建立的.这种没有荧光的复合物能够被用作荧光打开的化学传感器, 用来检测水中的百草枯, 因为WP5-百草枯的结合能力比WP5-G的结合能力强很多.这种识别不仅体现在两种客体与WP5的竞争包接能力, 同时也有pH响应.通过改变溶液的pH值, 可逆地控制组装和拆卸过程.与此同时, CN-可以与G中9号位发生亲核加成反应, 作为一种测定水中的CN-荧光传感器.

    2014年Hossain等[85]报道了一个独特的传感器43(图 26), 它能够在水中检测含量为0.020 μmol/L的CN-, 这比环境保护局(EPA)规定的饮用水中的CN-标准(0.20 μmol/L)要低得多.这个现成的传感器能够成功地检测两种市售染料中的CN-, 而没有受到其它10种阴离子的干扰.离散傅里叶变换(DFT)的计算结果进一步表明, CN-通过强大的静电相互作用, 在受体分子的两个铜离子之间架起了桥梁.这一策略提供了对环境和生物相关的选择性光学传感器的合理设计.

    图 26

    图 26.  化合物43的合成过程
    Figure 26.  Synthetic progress of compound 43

    2015年Lee等[86]合成了一个基于肽链铜配体的化学传感器44, 用于在纯水介质中比色-荧光检测CN-(图 27).肽链中的7-硝基-2, 1, 3-苯并呋喃与Cu2+结合, 导致溶液颜色从黄色到橙色的变化, 并且减少了荧光的释放.整个铜配合物能够灵敏且有选择性地在100%的水溶液中检测到浓度较低的CN-.在100%的水溶液中加入CN-, CN-立即将Cu2+从传感器配合物上络合下来, 从而使溶液的颜色从橙色变为黄色, 并产生了一种“打开”的荧光反应.以肽链为基础的配合物是一种潜在的、实用的方法, 可以在100%溶液中检测亚微米浓度的CN-.

    图 27

    图 27.  化合物44识别CN-的机理
    Figure 27.  Recognition mechanism of compound 44

    2016年Yang等[87]合成了化合物45, 将其制备成铜纳米粒子(CuNPs), 研究其依赖DNA序列的DNA-CuNP作为荧光团的光相互作用.这是第一次发现DNA- CuNP在荧光传感器的构筑中作为理想的荧光猝灭剂, 它可以根据一个类似于埃尔斯纳的反应被CN-打开荧光, 并且信号的开关依赖于聚合DNA序列的变化.由于纳米粒子尺寸很小, 并且与CN-的化学反应活性很高, 所以荧光很强, 类似于一盏打开的灯, 这对于精确监控短半衰期的CN-是非常重要的.由于CN-与DNA-CuNP之间独特的类似于埃尔斯纳的反应, 高选择性的纳米离子在实际的水和食物样本中得到了实际应用.

    图 28

    图 28.  DNA-CuNP 45识别CN-的机理
    Figure 28.  Recognition mechanism of DNA-CuNP 45

    2016年Bhowmick等[88]首次报道了以Co-二重三联吡啶配合物46, 它在包括水在内的极性溶剂中能够对CN-“裸眼”比色检测, 生成了相应的Co-三联吡啶配合物.新的Co三联吡啶配合物Co(4-吡啶)(CN)3的结构特征通过单晶XRD衍射能够被证明.作者采用紫外-可见分光光度法对CN-的传感性能进行研究, 并通过添加其它阴离子, Co-二重三联吡啶配合物对CN-的选择性进行了研究.

    2016年我们课题组[89]设计并合成了一种基于二羟基吩嗪的CN-荧光化学传感器47(图 29).该传感器47在纯水中具有较高的灵敏度和选择性. CN-响应机理为传感器的氢键和脱质子过程, 从而引起了显著的荧光增强过程.传感器对CN-的最低检测限为5.65×10-7 mol•L-1, 而其它的阴离子对这个传感性质几乎没有影响.此外, 基于传感器的试纸也被制造出来, 在水中也有良好的选择性.值得注意的是, 这个传感器被成功地用于检测食物样本中的CN-, 这证明了这是一个非常简单的工具, 用于在农业样本中对CN-进行检测.

    图 29

    图 29.  化合物47识别CN-的机理
    Figure 29.  Recognition mechanism of compound 47

    2016年Zeng等[90]合成了Ag@Au核壳纳米粒子(48), 并将其作为对水溶液中检测CN-的比色传感器, Ag@Au核壳纳米粒子加入CN-前后的性质通过紫外吸收光谱、透射电子显微镜、电喷射电离飞行时间质谱进行验证.这种传感的机理是基于CN-能够连续腐蚀双金属纳米粒子的金壳和银核, 溶液的颜色从紫色到橙色, 黄色, 最后是无色(图 30).通过滴定实验可以得出在520 nm处的吸光度变化与溶液中CN-的含量成线性关系, 相关系数达到0.995.最低检测限是0.16 μmol•L-1, 这在纳米粒子比色法中是最低的检测限.比色传感实验证明, 在其它16个阴离子存在时, Ag@Au核壳纳米粒子对CN-展现出非常好的选择性.该方法可用于饮用水中CN-的分析, 回收率为90%~116.4%, 相对标准偏差低于6.7%.

    图 30

    图 30.  纳米粒子48识别CN-的机理
    Figure 30.  Recognition mechanism of nanopartical 48

    2017年Singh等[91]研究了过氧化锌(ZnO2)纳米材料49作为一种从污染的水中清除CN-的有效材料. ZnO2合成的工艺专利已经在美国、南非、孟加拉国和印度获得. ZnO2纳米材料由聚乙烯吡咯(PVP)控制粒子的大小. PVP包裹ZnO2纳米粒子前后, 其特征通过扫描电子显微镜、透射电子显微镜、X射线衍射仪、傅立叶变换红外光谱和电喷射电离飞行时间质谱得到分析.用离子色谱法测定了PVP-ZnO2纳米粒子吸附后溶液中CN-的浓度.同时还根据pH值、吸附剂量、时间和氰化物浓度, 研究了PVP-ZnO2纳米粒子对CN-的吸附作用.在15 min内, 在pH值5.8~7.8范围内发现CN-能够被清除, 吸附数据与Langmuir-Fruendlich等温线相符合, 并观察到, 数据不仅遵循了等温线, 也遵循了二阶动力学.

    图 31

    图 31.  纳米粒子49识别CN-的机理
    Figure 31.  Recognition mechanism of nanopartical 49

    2017年我们课题组[92]报道了一种新颖高效的荧光检测水中离子的方法, 这个方法由基于柱5芳烃上的超分子传感器50完成的.这种新颖的方法如下所示:首先, 水溶性阳离子柱5芳烃(P5)和功能化的萘酰亚胺衍生物(N2)在水中自组装, 形成超分子传感器(P5N2), 然后, 在超分子传感器P5N2上引入了竞争配位, 加入了Al3+, 形成了新的超分子传感器(P5N2Al), 超分子传感器P5N2可以识别水中的Al3+, 而超分子传感器P5N2Al可以在水中高选择性和灵敏度的识别水中的CN-.因此, 对于传感器的设计来说这是一种新颖而又简单的方法可以有效地识别水中的阴阳离子.

    2017年Momeni等[93]报道了一种简单而绿色的方法, 用于测定水中的CN-, 它是基于铜纳米粒子51在水溶液中充当荧光传感器的(图 32).本研究中, 荧光纳米粒子在抗坏血酸当保护剂的情况下被合成出来.这种方法的制备非常简单, 成本低, 产率高, 可重复使用.准备好的纳米粒子的平均直径为10 nm, 在440 nm处出现了发射峰, 并且溶液发出蓝色荧光.然而, 在将CN-加入到纳米粒子传感体系的过程中, 由于CN-和铜之间的强相互作用, 它的荧光被明显地猝灭了.在最佳的条件下, 纳米粒子的荧光最低检测限0.37 μmol•L-1.该传感器具有较高的选择性和简单的操作, 可以在水样中荧光传感CN-.

    图 32

    图 32.  纳米粒子51识别CN-的机理
    Figure 32.  Recognition mechanism of nanopartical 51

    2012年Zelder等[94]描述了一种用固相空间分离提取作为一种快速、有效和经济的方法来光学检测复杂样品中的CN-.该固相体系52对CN-的光学检测比在同条件下使用的同类型的化学传感器要灵敏7倍.本文介绍了该方法检测如下几种样品: (1)有色植物样品中的内源性CN-和(2)烟草烟雾中的HCN.在一个简单的样本中, 对多个阴离子的光学响应已经被证明, 52可以用于检测CN-和SCN-.固化的水溶氰酸酯和固化的维生素B12被用作化学传感器, CN-的定性检测是通过生成相应的二氰基配合物, 使溶液的颜色由黄色变成紫色.烷基修饰的二氧化硅颗粒被用于在固相表面(检测区)固定传感分子, 并且可以去除彩色的疏水干扰物(萃取区).

    2014年Lu等[95]成功地合成出一种能够快速地、灵敏地、选择性地检测CN-的发磷光的高分子Au(Ⅰ)簇53(图 33).通过X射线吸收边缘结构(XANES)分析和扩展X射线吸收精细结构(EXAFS)分析, 得出分子Au(Ⅰ)簇对CN-表现出突出的传感性能是合理的.与其它CN-传感器相比, CN-与分子Au(Ⅰ)簇的反应机理表现出了几个关键的传感器特点.重要的是, 通过对固态的分子Au(Ⅰ)簇的磷光特性的研究, 作者首次展示了一个基于高分子Au(Ⅰ)簇的宏观多孔传感膜, 用于在复杂的样品中检测CN-, 包括红酒、咖啡、果汁和土壤.制备的传感膜继承了分子Au(Ⅰ)簇的传感能力, 并提供了一种高度灵敏的工具, 可以实时监测木薯中的CN-.

    图 33

    图 33.  高分子簇53识别CN-的机理
    Figure 33.  Recognition mechanism of polymer clusters 53

    2015年我们课题组[96]研究了一种新型的超分子金属离子传感器阵列, 值得一提的是, 这个五元的传感器阵列只需要一个合成的有机化合物54.凝胶因子在有机凝胶的状态表现出很强的聚集态荧光增强(AIE)效应, 54和阴离子的响应特性可以由不同的金属离子来调节.这个传感器阵列实现选择性的响应阴离子是通过凝胶用不同金属离子和阴离子的竞争配位.这个传感器阵列可以识别S2-、I-、CN-、SCN-四种阴离子, 具有较高的选择性和灵敏度.此外, 基于54的金属有机凝胶膜不仅可以作为方便的可逆的阴离子(CN-、SCN-、S2-、I-)检测工具, 还可以作为可擦除的安全显示材料. “竞争协调控制AIE模式”的概念提供了一种简单的方法, 可以合成基于金属的具有反应性的荧光材料, 如传感器阵列和其它超分子功能材料.

    2016年Aslan等[97]报道了基于近红外786高氯酸盐(IR-786)的传感器55作为在纯有机相和无溶剂的固体表面高选择性地检测CN-.在纯MeCN中, IR-786对两个阴离子(CN-和OH-)都具有选择性, 在IR-786的MeCN溶液中, 由于对CN-的亲核加成反应, IR-786的荧光黄到暗绿色的显著的颜色变化, 紫外吸收光谱从775 nm蓝移至430 nm的变化, 也证明了IR-786-(CN)的形成, 同时IR-786-(CN)在MeCN中明显的绿色荧光, 也证明了在MeCN中对CN-的选择性.同时, IR-786作为一种无溶剂固体状态传感器在环境中潜在应用的研究, 也证明了传感器55可用于对环境中CN-高选择性的传感.在无溶剂固体状态表面, IR-786可以灵敏地检测到水样本中到50~300 μmol•L-1的CN-, 氢氧根的干扰是很小的.

    2017年Yıldız等[98]演示了一个基于传感分子56的一次性使用试纸平台, 以荧光增强的方式检测CN-.报道的这个方法采用定制的图像处理算法, 使描述的这个简单的定量检测CN-的方法标准化, 通过识别试纸的颜色, 其对CN-的最低检测限低至10-12 mol•L-1.这种普通的算法适用于配备有摄像头的普通智能手机, 并将设备中的数据转换成定量CN-浓度.

    2017年Son等[99]开发和合成了一种新的比色和荧光化学传感器57, 它在80%的含水介质中比色和荧光检测CN-.可以用肉眼观察到, 当CN-加入后, 受体的紫外吸收(红移)和荧光发射(增强)都发生了变化.作者通过1H NMR和密度泛函理论说明传感器分子与CN-之间发生了去质子化.该受体允许高选择性检测低浓度的CN-, 这一浓度低于世界卫生组织规定的水平.因此, 这种识别行为使这种受体成为一种潜在的传感工具, 在实际应用中检测CN-.此外, 这种传感器受体的固体对CN-的检测也很灵敏.

    2017年Singh等[100]根据CN-特殊的亲和性, 设计用2-甲氧基-1-萘甲醛合成了两个双重激活的迈克尔加成化学计量荧光传感器58, 59.当CN-与缺电子的桥连的烯烃加成时, 分子中的电子给体和受体被阻断, 从而阻断了分子内的电荷转移(ICT)过程.通过紫外吸收和荧光发射光谱的变化, 观察到加成产物的紫外光谱蓝移并且荧光增强.红外光谱、核磁共振、质谱和密度函数理论(DFT)进一步支持了传感器和CN-之间的相互作用机理.同时, 传感器58在固体状态下同样在可见光下对CN-展现出良好的响应性.

    图 34

    图 34.  化合物5859的合成过程
    Figure 34.  Synthetic progress of compounds 58 and 59

    本文分别从纯有机相中的氰根离子识别、含水介质中的氰根离子识别、纯水相中的氰根离子识别和固相中的氰根离子识别四个方面综述了2010年以来关于氰根离子识别的相关文献.通过对这些传感器的合成方法, 检测手段和检测机理的研究, 能够总结出不同介质中氰根传感器的一般规律, 为今后氰根传感器的发展和研究提供一定的理论参考价值.总而言之, 由于化学传感器方便、快捷和成本低等优点, 利用人工合成的传感材料检测不同介质中的CN-迅速得到了广大科研工作者的关注.因此, 超分子化学领域中有大量涉及到小分子和聚合物的CN-传感器, 以及对新型纳米材料的合成和物理化学特性的研究.将这些不同领域的CN-传感器研究整合在一起, 代表了功能化传感材料领域的最新的和其重要的发展.在环境污染的话题进入白热化的时期, 该综述将为以后的CN-传感材料设计提供更多的帮助, 具有潜在的参考价值.

    1. [1]

      Anzenbacher, J. P.; Lubal, P.; Bucek, P.; Palacios, M. A.; Kozelkova, M. E. Chem. Soc. Rev. 2010, 39, 3954. doi: 10.1039/b926220m

    2. [2]

      Gale, P. A.; Garcia-Garrido, S. E.; Garric, J. Chem. Soc. Rev. 2008, 37, 151. doi: 10.1039/B715825D

    3. [3]

      Lemos, S. G.; Nogueira, A. R. A.; Torre-Neto, A. Parra A.; Alonso, J. J. Agric. Food. Chem. 2007, 55, 4658. doi: 10.1021/jf063746a

    4. [4]

      Wang, Q.; Xie, Y.; Ding, Y. Li, X.; Zhu, W. Chem. Commun. 2010, 46, 3669. doi: 10.1039/c001509a

    5. [5]

      林奇, 朱鑫, 陈佩, 符永鹏, 张有明, 魏太保, 化学学报, 2013, 71, 1516. doi: 10.7503/cjcu20130108Lin, Q.; Zhu, X.; Chen, P.; Fu, Y. P.; Zhang, Y. M.; Wei, T. B. Acta Chim. Sinica 2013, 71, 1516(in Chinese). doi: 10.7503/cjcu20130108

    6. [6]

      曲文娟, 李文婷, 张海丽, 张有明, 林奇, 姚虹, 魏太保, 有机化学, 2018, 38, 1792. http://manu19.magtech.com.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract346498.shtmlQu, W. J.; Li, W. T.; Zhang, H. L.; Zhang, Y. M.; Lin, Q.; Yao, H.; Wei, T. B. Chin. J. Org. Chem. 2018, 38, 1792(in Chinese). http://manu19.magtech.com.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract346498.shtml

    7. [7]

      李文婷, 曲文娟, 张海丽, 李翔, 林奇, 姚虹, 张有明, 魏太保, 有机化学, 2017, 37, 2619. http://manu19.magtech.com.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract346127.shtmlLi, W. T.; Qu, W. J.; Zhang, H. L.; Li, X.; Lin, Q.; Yao, H.; Zhang, Y. M.; Wei, T. B. Chin. J. Org. Chem. 2017, 37, 2619(in Chinese). http://manu19.magtech.com.cn/Jwk_yjhx/CN/abstract/abstract346127.shtml

    8. [8]

      Xu, Z.; Chen, X.; Kim, H. N.; Yoon, J. Chem. Soc. Rev. 2010, 39, 127. doi: 10.1039/B907368J

    9. [9]

      Sen, B.; Mukherjee, M.; Pal, S.; Mandal, S. K.; Hundal, M. S.; Khuda-Bukhshb, A. R.; Chattopadhyay, P. RSC Adv. 2014, 4, 15356. doi: 10.1039/C4RA00291A

    10. [10]

      Li, Q.; Guo, Y.; Shao, S. Analyst 2012, 137, 4497. doi: 10.1039/c2an35904a

    11. [11]

      Li, Q.; Yue, Y.; Guo, Y.; Shao, S. Sens. Actuators, B 2012, 173, 797. doi: 10.1016/j.snb.2012.07.105

    12. [12]

      Vennesland, B.; Conn, E. E.; Knowles, C. J.; Westley, J.; Wissing, F. Cyanide in Biology, Academic Press, London, 1981.

    13. [13]

      Way, J. L. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1984, 24, 451. doi: 10.1146/annurev.pa.24.040184.002315

    14. [14]

      Anderson, R.; Harland, W. Med., Sci. Law 1982, 22, 35. doi: 10.1177/002580248202200106

    15. [15]

      Becker, C. Vet. Hum. Toxicol. 1985, 27, 487. http://xueshu.baidu.com/s?wd=paperuri%3A%284868f2f0fa910a81cddfc7724af5521b%29&filter=sc_long_sign&tn=SE_xueshusource_2kduw22v&sc_vurl=http%3A%2F%2Fwww.ncbi.nlm.nih.gov%2Fpubmed%2F4082458&ie=utf-8&sc_us=7854635153229998112

    16. [16]

      Zamecnik, J.; Tam, J. J. Anal. Toxicol. 1987, 11, 47. doi: 10.1093/jat/11.1.47

    17. [17]

      Levin, B. C.; Cabrera, F. M.; Landron, F.; Clark, H. M.; Rodriguez, J. R.; Gurman, J. L.; Droz, L.; Yoklavich, M. F.; Rechani, P. R; Kaye, S. J. Forensic Sci. 1990, 35, 151.

    18. [18]

      Matsubara, K.; Akane, A.; Maseda, C.; Shiono, H. Forensic Sci. Int. 1990, 46, 203. doi: 10.1016/0379-0738(90)90306-J

    19. [19]

      Mayes, R. W. J. Forensic Sci. 1991, 36, 179. http://xueshu.baidu.com/s?wd=paperuri%3A%287e09c0148c1f98ff618a5b92601e106d%29&filter=sc_long_sign&tn=SE_xueshusource_2kduw22v&sc_vurl=http%3A%2F%2Fwww.ncbi.nlm.nih.gov%2Fpubmed%2F2007868&ie=utf-8&sc_us=2931823206420207733

    20. [20]

      Baird, C.; Cann, M. Macmillan 2005.

    21. [21]

      Selkoe, D. J.; Schenk, D. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2003, 43, 545. doi: 10.1146/annurev.pharmtox.43.100901.140248

    22. [22]

      Young, C.; Tidwel, L. Cyanide: Social, Industrial and Economic Aspects: Minerals, Metals, and Materials Society, Anderson, C., Warrendale, PA, 2001.

    23. [23]

      Keshava, K.; Torawaneb, P.; Kumawatd, M. K.; Tayadeb, K.; Sahooc, S. K.; Srivastavad, R.; Kuwarb, A. Biosens. Bioelectron. 2017, 92, 95. doi: 10.1016/j.bios.2017.02.006

    24. [24]

      Noh, J. Y.; Hwang, I. H.; Kim, H.; Song, E. J.; Kim, K. B.; Kim, C. Bull. Korean Chem. Soc. 2013, 34, 1985. doi: 10.5012/bkcs.2013.34.7.1985

    25. [25]

      Park, G. J.; Hwang, I. H.; Song, E. J.; Kim, H.; Kim, C. Tetrahedron 2014, 70, 2822. doi: 10.1016/j.tet.2014.02.055

    26. [26]

      Tang, L.; Zhou, P.; Zhong, K.; Hou, S. Sens. Actuators, B. 2013, 182, 439. doi: 10.1016/j.snb.2013.03.043

    27. [27]

      Chen, X.; Nam, S. W.; Kim, G. H.; Song, N.; Jeong, Y.; Shin, I.; Kim, S. K.; Kim, J.; Park, S.; Yoon, J. Chem. Commun. 2010, 46, 8953. doi: 10.1039/c0cc03398g

    28. [28]

      Qu, Y.; Jin, B.; Liu, Y.; Wu, Y.; Yang, L.; Wu, J.; Hua, J. Tetrahedron Lett. 2013, 54, 4942. doi: 10.1016/j.tetlet.2013.07.011

    29. [29]

      Goswami, S.; Manna, A.; Paul, S.; Das, A. K.; Aich, K.; Nandi, P. K. Chem. Commun. 2013, 49, 2912. doi: 10.1039/c3cc39256b

    30. [30]

      Lee, S. A.; You, G. R.; Choi, Y. W.; Jo, H. Y.; Kim, A. R.; Noh, I.; Kim, S. J.; Kim, Y.; Kim, C. Dalton Trans. 2014, 43, 6650. doi: 10.1039/C4DT00361F

    31. [31]

      Lee, S. A.; You, G. R.; Choi, Y. W.; Jo, H. Y.; Kim, A. R.; Noh, I.; Kim, S. J.; Kim, Y.; Kim, C. Dalton Trans. 2014, 43, 6650. doi: 10.1039/C4DT00361F

    32. [32]

      Jones, D. A. Phytochemistry 1998, 47, 15. http://xueshu.baidu.com/s?wd=paperuri%3A%282069a32dcd8364f9d35097eecd5ac7cb%29&filter=sc_long_sign&tn=SE_xueshusource_2kduw22v&sc_vurl=http%3A%2F%2Fwww.sciencedirect.com%2Fscience%2Farticle%2Fpii%2F0031942276851217&ie=utf-8&sc_us=12761399772486400349

    33. [33]

      Greenfield, R. A.; Brown, B. R.; Hutchins, J. B.; Iandolo, J. J.; Jackson, R.; Slater, L. N.; Bronze, M. S. Am. J. Med. Sci. 2002, 323, 326. doi: 10.1097/00000441-200206000-00005

    34. [34]

      Guidelines for Drinking-Water Quality. World Health Organization, Geneva, 1996.

    35. [35]

      Sun, S. S.; Lees, A. J. Chem. Commun. 2000, 17, 1687.

    36. [36]

      Miyaji, H.; Sessler, J. L. Angew. Chem. 2001, 113, 158. doi: 10.1002/(ISSN)1521-3757

    37. [37]

      Kim, Y.; Zhao, Y.; Gabba , F. P. Angew. Chem., Int. Ed. 2009, 48, 4957. doi: 10.1002/anie.v48:27

    38. [38]

      Anzenbacher, P.; Tyson, D. S.; Jursíkova, K.; Castellano, F. N. J. Am. Chem. Soc. 2002, 124, 6232. doi: 10.1021/ja0259180

    39. [39]

      Shang, L.; Jin, L.; Dong, S. Chem. Commun. 2009, 21, 3077. http://xueshu.baidu.com/s?wd=paperuri%3A%28ac425e84b05310c3693989e18aa6fcb0%29&filter=sc_long_sign&tn=SE_xueshusource_2kduw22v&sc_vurl=http%3A%2F%2Fwww.ncbi.nlm.nih.gov%2Fpubmed%2F19462092&ie=utf-8&sc_us=6474522771420522972

    40. [40]

      Senapati, D.; Dasary, S. S.; Singh, A. K.; Senapati, T.; Yu, H.; Ray, P. C. Chem.-Eur. J. 2011, 17, 8445. doi: 10.1002/chem.201100617

    41. [41]

      Gimeno, N.; Li, X.; Durrant, J. R.; Vilar, R. Chem.-Eur. J. 2008, 14, 3006. doi: 10.1002/(ISSN)1521-3765

    42. [42]

      Xu, Z.; Pan, J.; Spring, D. R.; Cui, J.; Yoon, J. Tetrahedron 2010, 66, 1678. doi: 10.1016/j.tet.2010.01.008

    43. [43]

      Cheng, X.; Tang, R.; Jia, H.; Feng, J.; Qin, J.; Li, Z. ACS Appl. Mater. Interfaces 2012, 4, 4387. doi: 10.1021/am3010412

    44. [44]

      Cho, D. G.; Sessler, J. L. Chem. Soc. Rev. 2009, 38, 1647. doi: 10.1039/b804436h

    45. [45]

      Afkhami, A.; Sarlak, N. Sens. Actuators, B 2007, 122, 437. doi: 10.1016/j.snb.2006.06.012

    46. [46]

      Badugu, R.; Lakowicz, J. R.; Geddes, C. D. J. Am. Chem. Soc. 2005, 127, 3635. doi: 10.1021/ja044421i

    47. [47]

      Wu, Y.; Wang, J.; Zeng, F.; Huang, S.; Huang, J.; Xie, H.; Yu, C.; Wu, S. ACS Appl. Mater. Interfaces 2016, 8, 1511. doi: 10.1021/acsami.5b11023

    48. [48]

      Kumari, N.; Jha, S.; Bhattacharya, S. J. Org. Chem. 2011, 76, 8215. doi: 10.1021/jo201290a

    49. [49]

      Zhou, X.; Lv, X.; Hao, J.; Liu, D.; Guo, W. Dyes Pigm. 2012, 95, 168. doi: 10.1016/j.dyepig.2012.03.025

    50. [50]

      Dong, M.; Peng, Y.; Dong, Y. M.; Tang, N.; Wang, Y. W. Org. Lett. 2012, 14, 130. doi: 10.1021/ol202926e

    51. [51]

      Khatua, S.; Samanta, D.; Bats, J. W.; Schmittel, M. Inorg. Chem. 2012, 51, 7075. doi: 10.1021/ic2022853

    52. [52]

      Fillaut, J. L.; Akdas-Kilig, H.; Dean, E.; Latouche, C.; Boucekkine, A. Inorg. Chem. 2013, 52, 4890. doi: 10.1021/ic302478e

    53. [53]

      Kang, J.; Song, E. J.; Kim, H.; Kim, Y. H.; Kim, Y.; Kim, S. J.; C. Kim, Tetrahedron Lett. 2013, 54, 1015. doi: 10.1016/j.tetlet.2012.12.053

    54. [54]

      Yang, L.; Li, X.; Yang, J.; Qu, Y.; Hua, J. ACS Appl. Mater. Interfaces 2013, 5, 1317. doi: 10.1021/am303152w

    55. [55]

      Yang, Y.; Yin, C.; Huo, F.; Chao, J.; Zhang, Y.; Cheng, F. Sens. Actuators, B 2014, 193, 220. doi: 10.1016/j.snb.2013.11.094

    56. [56]

      Liu, Y. W.; Kao, M. X.; Wu, A. T. Sens. Actuators, B 2015, 208, 429. doi: 10.1016/j.snb.2014.11.039

    57. [57]

      Xing, P.; Xu, Y.; Li, H.; Liu, S.; Lu, A.; Sun, S. Sci Rep. 2015, 5, 16528. doi: 10.1038/srep16528

    58. [58]

      Bejoymohandas, K. S.; Kumar, A.; Sreenadh, S.; Varathan, E.; Varughese, S.; Subramanian, V.; Reddy, M. L. P. Inorg. Chem. 2016, 55, 3448. doi: 10.1021/acs.inorgchem.5b02885

    59. [59]

      Volpi, G. J. Chem. Educ. 2016, 93, 891. doi: 10.1021/acs.jchemed.5b00750

    60. [60]

      Wu, H.; Chen, Y.; Rao, C.; Fan, D.; Wei, H.; Liu, C. Tetrahedron Lett. 2016, 57, 4969. doi: 10.1016/j.tetlet.2016.09.083

    61. [61]

      Wang, L.; Zhu, L.; Li, L.; Cao, D. RSC Adv. 2016, 6, 55182. doi: 10.1039/C6RA10073B

    62. [62]

      Huo, F.; Zhang, Y.; Yue, Y.; Chao, J.; Zhang, Y.; Yin, C. Dyes Pigm. 2017, 143, 270. doi: 10.1016/j.dyepig.2017.04.050

    63. [63]

      Liu, J.; Liu, Y.; Liu, Q.; Li, C.; Sun, L.; Li, F. J. Am. Chem. Soc. 2011, 133, 15276. doi: 10.1021/ja205907y

    64. [64]

      Lee, H.; Kim, H. J. Tetrahedron Lett. 2012, 53, 5455. doi: 10.1016/j.tetlet.2012.07.128

    65. [65]

      Jo, J.; Olasz, A.; Chen, C. H.; Lee, D. J. Am. Chem. Soc. 2013, 135, 3620. doi: 10.1021/ja312313f

    66. [66]

      Robbins, T. F.; Qian, H.; Su, X.; Hughes, R. P.; Aprahamian, I. Org. Lett. 2013, 15, 2386. doi: 10.1021/ol4008298

    67. [67]

      Lin, W. C.; Fang, S. K.; Hu, J. W.; Tsai, H. Y.; Chen, K. Y. Anal. Chem. 2014, 86, 4648. doi: 10.1021/ac501024d

    68. [68]

      Pramanik, S.; Bhalla, V.; Kumar, M. ACS Appl. Mater. Interfaces 2014, 6, 5930. doi: 10.1021/am500903d

    69. [69]

      Qu, W.; Gao, G.; Shi, B.; Zhang, P.; Wei, T.; Lin, Q.; Yao, H.; Zhang, Y. Supramol. Chem. 2014, 26, 403. doi: 10.1080/10610278.2013.844814

    70. [70]

      Qu, W.; Gao, G.; Shi, B.; Zhang, P.; Wei, T.; Lin, Q.; Yao, H.; Zhang, Y. Supramol. Chem. 2014, 26, 403. doi: 10.1080/10610278.2013.844814

    71. [71]

      Chen, K. Y.; Lin, W. C. Dyes Pigm. 2015, 123, 1. doi: 10.1016/j.dyepig.2015.07.012

    72. [72]

      Qiao, L.; Cai, Y.; Yao, H.; Lin, Q.; Zhu, Y. R.; Li, H.; Zhang, Y. M.; Wei, T. B. Spectrochim. Acta., Part A 2015, 136, 1047. doi: 10.1016/j.saa.2014.09.128

    73. [73]

      Chow, C. F.; Ho, P. Y.; Wong, W. L.; Gong, C. B. Chem.-Eur. J. 2015, 21, 12984. doi: 10.1002/chem.201501448

    74. [74]

      Cheng, X.; Li, H.; Zheng, F.; Lin, Q.; Zhang, Y.; Yao, H.; Wei, T. Dyes Pigm. 2016, 127, 59. doi: 10.1016/j.dyepig.2015.12.021

    75. [75]

      Jeong, J. W.; Angupillai, S.; Kim, I. J.; Jeonga, J.; Kim, H. S.; So, H. S.; Son, Y. A. Sens. Actuators, B 2016, 237, 341. doi: 10.1016/j.snb.2016.06.107

    76. [76]

      Singh, Y.; Ghosh, T. Talanta 2016, 148, 257. doi: 10.1016/j.talanta.2015.10.085

    77. [77]

      Wei, T. B.; Li, W. T.; Li, Q.; Qu, W. J.; Li, H.; Yan, G. T.; Lin, Q.; Yao, H.; Zhang, Y. M. RSC Adv. 2016, 6, 43832. doi: 10.1039/C6RA06769G

    78. [78]

      El-Shishtawy, R. M.; Al-Zahrani, F. A. M.; Al-amshany, Z. M.; Asiri, A. M. Sens. Actuators, B 2017, 240, 288. doi: 10.1016/j.snb.2016.08.168

    79. [79]

      Wang, L.; Li, L.; Cao, D. Sens. Actuators, B 2017, 241, 1224. doi: 10.1016/j.snb.2016.10.007

    80. [80]

      Liu, T.; Huo, F.; Li, J.; Cheng, F.; Yin, C. Sens. Actuators, B 2017, 239, 526. doi: 10.1016/j.snb.2016.08.051

    81. [81]

      Chen, J.; Li, W.; Li, Q.; Lin, Q.; Yao, H.; Zhang, Y.; Wei, T. Chin. J. Chem. 2017, 35, 1165. doi: 10.1002/cjoc.v35.7

    82. [82]

      Shiraishi, Y.; Sumiya, S.; Manabe, K.; Hirai, T. ACS Appl. Mater. Interfaces 2011, 3, 4649. doi: 10.1021/am201069n

    83. [83]

      Lin, Q.; Liu, X.; Wei, T. B.; Zhang, Y. M. Chem. Asian J. 2013, 8, 3015. doi: 10.1002/asia.v8.12

    84. [84]

      Wang, P.; Yao, Y.; Xue, M. Chem. Commun. 2014, 50, 5064. doi: 10.1039/C4CC01403K

    85. [85]

      Rhaman, M. M.; Alamgir, A.; Wong, B. M.; Powell, D. R.; Hossain, M. A. RSC Adv. 2014, 4, 54263. doi: 10.1039/C4RA10813B

    86. [86]

      Jung, K.; Lee, H. Anal. Chem. 2015, 87, 9308. doi: 10.1021/acs.analchem.5b01982

    87. [87]

      Qing, Z.; Hou, L.; Yang, L.; Zhu, L.; Yang, S.; Zheng, J.; Yang, R. Anal. Chem. 2016, 88, 9759. doi: 10.1021/acs.analchem.6b02720

    88. [88]

      Bhowmick, I.; Boston, D. J.; Higgins, R. F.; Klug, C. M.; Shores, M. P.; Gupta, T. Sens. Actuators, B 2016, 235, 325. doi: 10.1016/j.snb.2016.05.053

    89. [89]

      Wei, T. B.; Li, W. T.; Li, Q.; Su, J. X.; Qu, W. J.; Lin, Q.; Yao, H.; Zhang, Y. M. Tetrahedron Lett. 2016, 57, 2767. doi: 10.1016/j.tetlet.2016.05.028

    90. [90]

      Li, Y.; Wang, Q.; Zhou, X.; Wen, C.; Yu, J.; Han, X.; Li, X.; Yan, Z.; Zeng, J. Sens. Actuators, B 2016, 228, 366. doi: 10.1016/j.snb.2016.01.022

    91. [91]

      Uppa, S. H.; Tripathy, S.; Chawla, S.; Sharma, B.; Dalai, M. K.; Singh, S. P.; Singh, S.; Singh, N. J. Environ. Sci. 2017, 55, 76. doi: 10.1016/j.jes.2016.07.011

    92. [92]

      Lin, Q.; Liu, L.; Zheng, F.; Mao, P. P.; Liu, J.; Zhang, Y. M.; Yao, H.; Wei, T. B. Tetrahedron 2017, 73, 5307. doi: 10.1016/j.tet.2017.07.028

    93. [93]

      Momeni, S.; Ahmadi, R.; Safavi, A.; Nabipour, I. Talanta 2017, 175, 514. doi: 10.1016/j.talanta.2017.07.056

    94. [94]

      Männel-Croisé, C.; Zelder, F. ACS Appl. Mater. Interfaces 2012, 4, 725. doi: 10.1021/am201357u

    95. [95]

      Zong, C.; Zheng, L. R.; He, W.; Ren, X.; Jiang, C.; Lu, L. Anal. Chem. 2014, 86, 1687. doi: 10.1021/ac403480q

    96. [96]

      Lin, Q.; Lu, T. T.; Zhu, X.; Sun, B.; Yang, Q. P.; Wei, T. B.; Zhang, Y. M. Chem. Commun. 2015, 51, 1635. doi: 10.1039/C4CC07814D

    97. [97]

      Barare, B.; Babahan, I.; Hijji, Y. M.; Bonyi, E.; Tadesse, S.; Aslan, K. Sensors 2016, 16, 271. http://xueshu.baidu.com/s?wd=paperuri%3A%2880c72ccbbcad0f88dca9f2bbd1c64c94%29&filter=sc_long_sign&tn=SE_xueshusource_2kduw22v&sc_vurl=http%3A%2F%2Fwww.ncbi.nlm.nih.gov%2Fpmc%2Farticles%2FPMC4813846%2F&ie=utf-8&sc_us=3697064512237484404

    98. [98]

      Incel, A.; Akın, O.; Cağır, A.; Yıldız,Ü. H.; Demir, M. M. Sens. Actuators, B 2017, 252, 886. doi: 10.1016/j.snb.2017.05.185

    99. [99]

      Kim, M. J.; Manivannan, R.; Kim, I. J.; Son, Y. A. Sens. Actuators, B 2017, 253, 942. doi: 10.1016/j.snb.2017.07.049

    100. [100]

      Maurya, N.; Singh, A. K. Sens. Actuators, B 2017, 245, 74. doi: 10.1016/j.snb.2017.01.121

  • 图 1  三种氰根传感器的方法

    Figure 1  Three approaches for chemosensors

    (a) Chemosensor bearing a signaling subunit as well as a binding site, (b) displacement approach, and (c) chemodosimeter

    图 2  化合物2识别的机制和可见光下溶液照片

    Figure 2  Recognition mechanism of compound 2 and the solution image in visible light

    图 3  化合物3识别的机制和荧光下溶液照片

    Figure 3  Recognition mechanism of compound 3 and the solution image under the UV-lamp

    图 4  化合物6的合成过程

    Figure 4  Synthetic progress of compound 6

    图 5  化合物7识别CN-的示意图

    Figure 5  Schematic diagram of compound 7 recogniting CN-

    图 6  化合物10识别CN-的机理

    Figure 6  Recognition mechanism of compound 10

    图 7  化合物11的合成过程

    Figure 7  Synthetic progress of compound 11

    图 8  化合物12识别CN-的机理

    Figure 8  Recognition mechanism of compound 12

    图 9  化合物13识别CN-的机理

    Figure 9  Recognition mechanism of compound 13

    图 10  化合物14识别CN-的机理

    Figure 10  Recognition mechanism of compound 14

    图 11  化合物15的合成过程

    Figure 11  Synthetic progress of compound 15

    图 12  化合物18识别CN-的机理

    Figure 12  Recognition mechanism of compound 18

    图 13  纳米粒子19识别CN-的机理

    Figure 13  Recognition mechanism of nanoparticle 19

    图 14  化合物20识别CN-的机理

    Figure 14  Recognition mechanism of compound 20

    图 15  化合物21识别CN-的机理

    Figure 15  Recognition mechanism of compound 21

    图 16  化合物22识别CN-的机理

    Figure 16  Recognition mechanism of compound 22

    图 17  化合物23识别CN-的机理

    Figure 17  Recognition mechanism of compound 23

    图 18  化合物24的合成过程

    Figure 18  Synthetic progress of compound 24

    图 19  化合物25识别CN-的机理

    Figure 19  Recognition mechanism of compound 25

    图 20  化合物27识别CN-的机理

    Figure 20  Recognition mechanism of compound 27

    图 21  化合物28识别CN-的机理

    Figure 21  Recognition mechanism of compound 28

    图 22  化合物3132的合成过程

    Figure 22  Synthetic progress of compounds 31 and 32

    图 23  化合物33识别CN-的机理

    Figure 23  Recognition mechanism of compound 33

    图 24  化合物34识别CN-的机理

    Figure 24  Recognition mechanism of compound 34

    图 25  化合物40识别CN-的机理

    Figure 25  Recognition mechanism of compound 40

    图 26  化合物43的合成过程

    Figure 26  Synthetic progress of compound 43

    图 27  化合物44识别CN-的机理

    Figure 27  Recognition mechanism of compound 44

    图 28  DNA-CuNP 45识别CN-的机理

    Figure 28  Recognition mechanism of DNA-CuNP 45

    图 29  化合物47识别CN-的机理

    Figure 29  Recognition mechanism of compound 47

    图 30  纳米粒子48识别CN-的机理

    Figure 30  Recognition mechanism of nanopartical 48

    图 31  纳米粒子49识别CN-的机理

    Figure 31  Recognition mechanism of nanopartical 49

    图 32  纳米粒子51识别CN-的机理

    Figure 32  Recognition mechanism of nanopartical 51

    图 33  高分子簇53识别CN-的机理

    Figure 33  Recognition mechanism of polymer clusters 53

    图 34  化合物5859的合成过程

    Figure 34  Synthetic progress of compounds 58 and 59

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  • 发布日期:  2019-05-01
  • 收稿日期:  2018-10-16
  • 修回日期:  2018-12-27
  • 网络出版日期:  2019-05-31
通讯作者: 陈斌, bchen63@163.com
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    沈阳化工大学材料科学与工程学院 沈阳 110142

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