Citation: DONG Zhiyun, LIU Yang, WANG Yingjin, ZHAO Sanhu, XI Fugui. Naphthalimide-Benzimidazolium Based Fluorescent Chemosensor for Highly Selective Recogniton of H2PO4-[J]. Chinese Journal of Applied Chemistry, 2020, 37(7): 839-846. doi: 10.11944/j.issn.1000-0518.2020.07.200004
基于萘酰亚胺-苯并咪唑鎓的荧光传感器对H2PO4-的高选择性识别
English
Naphthalimide-Benzimidazolium Based Fluorescent Chemosensor for Highly Selective Recogniton of H2PO4-
-
Key words:
- benzimidazolium
- / naphthalimide
- / H2PO4-
- / fluorescent sensor
-
近年来设计和合成新型的阴离子受体受到了广泛的关注[1-4]。 磷酸盐在生物遗传信息储存、基因调控等方面发挥着重要的作用,农业生产中磷肥的过量使用易导致藻类过度生长,从而使水生态系统富营养化,因此,高选择性地识别磷酸盐已经成为阴离子识别的研究热点之一,其中H2PO-4的识别备受关注[5-8]。 目前,已报道的可用于识别H2PO-4的荧光探针中主要以酰胺[9-13]、亚胺[14]、腙[15]、羟基[16-18]、铽-聚氨酯泡沫材料(Tb-PUFs)[19]、脲[20-21]和硫脲[22]等基团作为识别位点。 咪唑鎓中2位H作为识别位点,可与H2PO-4形成特殊的离子型氢键[(C——H)+····H2PO-4]作用[23],吡啶环中的N原子作为识别位点可与H2PO-4形成氢键N··H——O,萘酰亚胺既是荧光分子探针设计中的优秀候选荧光基团[24],其中的O原子又可作为识别位点与H2PO-4形成氢键O·H——O。 因此,本文以萘酰亚胺为发光基团,同时引入咪唑鎓和吡啶两种基团设计合成了受体分子1,并设计合成了受体分子2作为对照,以考察这些识别位点在阴离子识别过程中的协同作用,合成路线如下Scheme 1所示。
Scheme1
1. 实验部分
1.1 试剂和仪器
1, 8-萘二甲酸酐、乙醇胺、氯化亚砜和1-溴戊烷购自阿拉丁试剂有限公司;2-氯甲基吡啶盐酸盐购自上海韶远试剂有限公司;N, N-二甲基甲酰胺(DMF)、无水甲醇、二氯甲烷、无水乙醚、乙腈、苯并咪唑、六氟磷酸铵、四丁基氟化铵、四丁基氯化铵、四丁基溴 化铵、四丁基碘化铵、四丁基醋酸铵、四丁基硫酸氢铵、四丁基磷酸二氢铵、四丁基高氯酸铵、四丁基硝酸铵购自国药集团化学试剂有限公司,以上试剂纯度均为分析纯。 用于光谱测试的溶剂均经4 A分子筛干燥后使用;用于识别性能研究的阴离子的四丁基铵盐均在60 ℃真空干燥后使用。
Bruker 400 MHz型核磁共振波谱仪(NMR,德国布鲁克公司);Hitachi F-4600型荧光光谱仪(日本日立公司);LCMS-8030型液相色谱质谱联用仪(日本岛津公司)。
1.2 受体分子1和2的合成与表征
N-(2-氯乙基)-1, 8-萘酰亚胺[25] 1H NMR(CDCl3, 400 MHz), δ:8.63(m, 2H, ArH), 8.24(m, 2H, ArH), 7.78(m, 2H, ArH), 4.58(t, J=5.2 Hz, CH2), 3.85(t, J=5.3 Hz, CH2);IR(KBr), σ/cm-1:3080, 2972, 1964, 1626, 1661, 1585, 1441, 1383, 1342, 1256, 1234, 1169, 1101, 1009, 783。
N-(2-吡啶基甲基)苯并咪唑[26] 1H NMR(CDCl3, 400 MHz), δ:9.53(s, 1H, BimC2-H), 8.48(d, J=4.8 Hz, 1H, ArH), 7.84~7.87(m, 2H, ArH), 7.71~7.75(m, 1H, ArH), 7.51 (m, 2H, ArH), 7.23~7.26(m, 2H, ArH), 5.98(s, 4H, ArH);IR(KBr), σ/cm-1:3086, 2955, 2779, 1611, 1582, 1497, 1433, 1364, 743。
N-戊基苯并咪唑[27] 1H NMR(DMSO-d6, 400 MHz), δ:7.99(s, 1H, BimC2-H), 7.80~7.83(m, 1H, ArH), 7.39~7.41(m, 1H, ArH), 7.27~7.34(m, 2H, ArH), 3.62(t, J=6.0 Hz, CH2), 1.57~1.64(m, CH2), 1.30~1.33(m, 4H, 2×CH2), 0.87(t, J=6.0 Hz, CH3);IR(KBr), σ/cm-1:2924, 2939, 1614, 1546, 1458, 1377, 740。
受体分子1 N2气气氛下,将N-(2-氯乙基)-1, 8-萘酰亚胺0.78 g(3.0 mmol)和DMF 30 mL置于配有回流冷凝管和磁搅拌的100 mL两口烧瓶中,升温至120 ℃,缓慢滴加溶于10 mL DMF的N-(2-吡啶基甲基)苯并咪唑0.73 g(3.5 mmol),用时约1 h,然后加热回流反应3 d,将反应液冷却至室温,析出固体,抽滤,所得固体用无水乙醚洗涤3次,真空干燥。 将所得固体0.94 g(2 mmol)和30 mL去离子水置于单口瓶中,加入NH4PF6 0.49 g(3 mmol),室温搅拌5 h。待 反应结束后,旋蒸除去溶剂,粗产品经柱层析分离,二氯甲烷∶甲醇(20∶1,体积比)为洗脱剂,得淡黄色固体0.72 g,即受体分子1,收率62%。 1H NMR(DMSO-d6, 400 MHz), δ:9.97 (s, 1H, BimC2-H),8.48(d, 2H, J=7.8 Hz, ArH), 8.39(d, 2H, J=7.2 Hz, ArH), 8.30(d, 1H, J=4.3 Hz, ArH), 8.24(d, 1H, J=7.9 Hz, ArH), 7.96(d, 1H, J=7.8 Hz, ArH), 7.89~7.82(m, 3H, ArH),7.73~7.64(m, 2H, ArH), 7.42(d, 1H, J=7.8 Hz, ArH), 7.37~7.27(m, 1H, ArH), 5.82(s, 2H, CH2), 4.96(t, 2H, J=5.3 Hz, CH2), 4.57(t, 2H, J=5.2 Hz, CH2);13C NMR(DMSO-d6, 100 MHz), δ: 164.25, 153.51, 149.95, 143.84, 137.98, 135.09, 131.81, 131.77, 131.72, 131.36, 128.01, 127.69, 127.29, 127.23, 124.06, 122.66, 122.30, 114.41, 114.06, 51.38, 46.03, 39.45;IR(KBr), σ/cm- 1:3348, 3319, 3159, 3105, 2964, 1701, 1664, 1591, 1568, 1485, 1439, 1358, 1138, 852, 783, 759;ESI-MS, m/z:[1-PF-6]+计算值433.17,实测值433.17。
受体分子2 N2气气氛下,将N-(2-氯乙基)-1, 8-萘酰亚胺0.78 g(3.0 mmol)和DMF 30 mL置于配有回流冷凝管和磁搅拌的100 mL两口烧瓶中,升温至120 ℃,缓慢滴加溶于10 mL DMF的N-戊基苯并咪唑0.66 g(3.5 mmol),用时约40 min,然后加热回流反应1 d,将反应液冷却至室温,析出固体,抽滤,所得固体用无水乙醚洗涤3次,真空干燥。将所得固体0.90 g(2 mmol)和30 mL去离子水置于单口瓶中,加入NH4PF6 0.49 g(3 mmol),室温搅拌5 h至不再有固体产 生,过滤,水洗3次后真空干燥,得黄色固体0.88 g,即受体分子 2,收率79%。 1H NMR(DMSO-d6, 400 MHz),δ:9.84(s, 1H, BimC2-H), 8.48(d, 2H, J=8.0 Hz, ArH), 8.39(d, 2H, J=7.2 Hz, ArH), 8.21~8.11(m, 2H, ArH), 7.86(t, 2H, J=7.5 Hz, ArH), 7.65~7.76(m, 2H, ArH), 4.89(t, 2H, J=6.2 Hz, ArH), 4.53(t, 2H, J=6.2 Hz, CH2), 4.40(t, 2H, J=6.3 Hz, CH2), 1.71~1.75 (m, 2H, CH2), 1.18~1.22(m, 4H, 2CH2), 0.75(t, 3H, J=6.4 Hz, CH3);13C NMR(DMSO-d6, 100 MHz), δ: 164.27, 143.02, 135.09, 131.81, 131.64, 131.24, 128.03, 127.65, 127.15, 127.08, 122.32, 114.21, 113.88, 46.92, 45.95, 45.32, 28.92, 27.95, 21.95, 14.04;IR(KBr), σ/cm- 1:3097, 2958, 2927, 2870, 1703, 1662, 1591, 1562, 1485, 1460, 1438, 1367, 1352, 839, 780, 758;ESI-MS, m/z:[1-PF-6]+计算值412.20,实测值412.20。
1.3 阴离子识别性能测试
在5.0×10-6 mol/L的受体分子1和2的乙腈溶液中,通过累计加样的方式逐次加入5.0×10-4 mol/L的阴离子的四丁基铵盐的乙腈溶液,搅拌2 min,待平衡后测定其荧光发射光谱。
受体分子(H)与阴离子(G)的结合比通过Job曲线法[28]测定,使受体分子和阴离子的总浓度固定为5×10-6 mol/L,依次改变受体分子与阴离子的物质的量比,使阴离子的物质的量分数x(G)分别 为0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0,测试荧光发射光谱。 以配合物的浓度c(HG)对x(G)作图,受体分子与阴离子的结合比就是曲线最大值那一点的x(G)值。 其中,c(HG)=(I0-I)/I0×c(H), I0代表未加阴离子的受体分子的荧光发射强度,I代表加入阴离子后的荧光发射强度,c(H)是相应的受体分子的浓度。
2. 结果与讨论
2.1 荧光光谱分析
首先通过荧光发射光谱研究了受体分子1和2与阴离子F-、Cl-、Br-、I-、AcO-、HSO-4、H2PO-4、ClO-4、NO-3之间的相互作用。 在CH3CN溶液中,使用332 nm光作为激发光,受体分子1和2均有两个荧光发射峰,分别位于365和382 nm,加入阴离子,使其物质的量为受体分子的10倍。 如图 1所示,加入阴离子 H2PO-4,时,受体分子1和2的猝灭程度均为最大,并且受体分子1的猝灭程度远大于受体分子2。 而F-、Cl-、Br-、Ⅰ-、AcO-、HSO-4、ClO-4、NO-3的加入引起受体分子1和2荧光强度的变化程度均较小,该结果表明受体分子1和2能高选择性的识别H2PO-4,可作为 H2PO-4的荧光关闭型(turn-off)传感器。
图 1
图 1. 受体分子1和2的CH3CN溶液(浓度均为5.0×10-6 mol/L)中加入10倍化学计量不同阴离子后的荧光强度变化图(I0为受体分子在382 nm处的荧光发射强度,I为受体分子中加入阴离子后在382 nm处的 荧光发射强度)Figure 1. Relative emission changes between the emission intensity of receptors 1 and 2(5.0×10-6 mol/L) in the presence of 10 stoichiometic corresponding anion(I) and the receptor alone (I0), in acetonitrile为了进一步研究受体分子与H2PO-4的识别性能,进行了荧光滴定实验。 在5×10-6 mol/L的受体分子1和2的CH3CN溶液中不断加入H2PO-4 (0~10倍化学计量), 如图 2所示,随着阴离子H2PO-4的不断加入,受体分子1和2位于365和382 nm处的荧光吸收峰强度不断减弱,在加入10倍化学计量的H2PO-4时,受体分子1的荧光猝灭率高达 98%,而受体分子2的荧光猝灭率仅为24%,说明受体分子1对H2PO-4的识别性能更好。
图 2
图 2. 在受体分子1和2的CH3CN溶液(浓度均为5.0×10-6 mol/L)中加入不同化学计量(0, 0.1, 0.2, 0.5, 1.0, 2.0, 1.5, 2.0, 2.5, 3.0, 3.5, 4.0, 4.5, 5.0, 6.0, 7.0, 8.0, 9.0, 10.0) H2PO- 4时的荧光光谱变化图;内插图:加入H2PO-4前后受体分子在365 nm紫外灯下的荧光变化图Figure 2. Fluorescence titrations of receptors 1 and 2(5.0×10-6 mol/L) with different stoichiometic H2PO-4(0, 0.1, 0.2, 0.5, 1.0, 2.0, 1.5, 2.0, 2.5, 3.0, 3.5, 4.0, 4.5, 5.0, 6.0, 7.0, 8.0, 9.0, 10.0) in CH3CN; Insets:fluorescent color of receptors 1 and 2 in the absence and presence of H2PO-4 under UV lamp excited at 365 nm同时如图 2中的内插图所示,在365 nm的紫外灯照射下,H2PO-4加入到受体分子1和2的CH3CN溶液后,荧光明显消失。上述实验结果表明受体分子1和2与H2PO-4之 间存在相互作用,阴离子H2PO-4的加入,促进了萘酰亚胺与苯并咪唑鎓之间的光诱导电子转移过程(PET)[29],为了考察其它阴离子F-、Cl-、Br-、Ⅰ-、AcO- 、HSO-4、ClO-4、NO-3在识别H2PO-4离子时的干扰情况,进行了H2PO-4离子和这些阴离子的竞争性实验[30],如图 3所示,加入2倍化学计量的其它阴离子,受体分子1的荧光依然能被H2PO-4显著猝灭,表明在受体分子1识别H2PO-4离子时,不会受到其它阴离子的干扰。 为 了研究受体分子1对H2PO-4的检测限,将不同浓度的H2PO-4分别加入到含有5.0×10-6 mol/L受体分子1的乙腈溶液中,测其相应的荧光强度,然后将382 nm处 的荧光强度变化值(I0 -I)与对应的H2PO-4浓度作出工作曲线(Y=61.72c+185.84),结果如图 4所示,根据检测限公式c=3Sb/m[31] (式中,Sb是空白溶液的标准偏差,m是校准曲线的斜率)计算出受体分子1对H2PO-4的检测限为6.90×10-6 mol/L。
图 3
图 4
2.2 受体分子与阴离子的结合比以及结合常数的计算
受体分子与阴离子的结合比可以通过Job曲线法确定,如图 5所示,Job曲线中[HG]最大值对应的x(G)值为0.5,表明受体分子1和2与H2PO-4均是按照1∶1的模式结合的
图 5
在超分子体系中,如果受体分子和阴离子结合形成化学计量比为1∶1的配合物,可通过方程(1)进行非线性拟合求出受体分子和阴离子的结合常数[32]:
$ \begin{array}{l} I = {I_0} + \left( {{I_{{\rm{lim}}}} - {I_0}} \right)/2c({\rm{H}})\\ \left\{ {c({\rm{H}}) + c({\rm{G}}) + 1/K - {{\left[ {{{(c({\rm{H}}) + c({\rm{G}}) + 1/K)}^2} - 4c({\rm{H}})c({\rm{G}})} \right]}^{1/2}}} \right\} \end{array} $
(1) 式中,I0代表受体分子未加阴离子时的荧光发射强度;I代表加入阴离子后形成的络合物的荧光发射强度,c(H)代表受体分子的浓度(mol/L);c(G)代表阴离子的浓度(mol/L);K为受体分子和阴离子的结 合常数(L/mol)。 通过最小二乘法非线性拟合荧光光谱滴定曲线计算得到受体分子1和2与阴离子的结合常数K以及相关系数R2(见表 1)。 如表 1所示,相关系数R2均大于0.99,再次表明受体分子1和 2与H2PO-4均是按照1∶1的模式结合的。
表 1
Anion Receptor 1 Receptor 2 K/(L·mol-1) R2 Binding ratio K/(L·mol-1) R2 Binding ratio F- (2.33±0.02)×104 0.992 2 1:1 (4.74±0.16)×103 0.991 0 1:1 AcO- (5.21±0.04)×103 0.990 7 1:1 (4.21±0.06)×103 0.993 1 1:1 HSO4- (5.36±0.09)×103 0.995 4 1:1 (2.214±0.02)×103 0.992 2 1:1 H2PO4- (1.25±0.11)×105 0.991 7 1:1 (1.51±0.02)×104 0.990 8 1:1 2.3 识别机理和结合模式探讨
在受体分子1的DMSO-d6溶液(5.0×10-3 mol/L)中加入0.5倍化学计量的H2PO-4,快速产生了白色沉淀,未得到有效的核磁信号,因此无法通过1H NMR研究受体分子与 H2PO-4相互作用的机理。 使用Gaussian 09软件在PCM(MeCN)-B3LYP/6-31+G(d, P)的水平下,利用密度泛函(DFT)分别模拟计算了受体分子1和2与H2PO-4之间的相互作用模式。 如图 6所示,受体分子1与H2PO-4之间形成了C5——H8…O22、O50…H27——O26、N61…H25——O24这3种氢键,而受体分子2与H2PO-4之间形成了C5——H8…O35、C61——63…H38两种氢键(具体键长如表 2所示),这与荧光测试的结果一致,表明具有多种识别位点的受体分子]1在构型上与H2PO-4更匹配。 表 3列出了受体分子1和2与H2PO-4结合后的HOMO能级、LUMO能级,以及HOMO-LUMO的能隙差(HLG),受体分子1与H2PO-4结合的HLG为3.85 eV,受体分子2与H2PO-4结合的HLG为3.97 eV,由此可见,受体分子1与H2PO-4之间的相互作用要比受体分子2与H2PO-4之间的相互作用更强。
图 6
表 2
Receptor 1 Receptor 2 Heavy atom distance/nm H-bond distance/nm Heavy atom distance/nm H-bond distance/nm O50——O26 0.283 3 O30——H27 0.186 7 C5——O35 0.294 7 H8——O35 0.186 2 C5——O22 0.293 4 H8——O22 0.184 9 O63——O37 0.281 0 H38——O63 0.183 3 N61——O24 0.283 1 H25——O61 0.184 5 表 3
HOMO/eV LUMO/eV HLG/eV 1-H2PO4- -6.80 -2.95 3.85 2-H2PO4- -6.83 -2.86 3.97 2.4 样品中H2PO-4离子的测定
配制受体分子1的CH3CN溶液(5.0×10-6 mol/L),四丁基磷酸二氢铵的CH3CN溶液(浓度分别为4.0×10-3、6.0×10-3和1.2×10-2 mol/L)。 分别移取受体分子1的 CH3CN溶液2 mL,依次加入5 μL不同浓度的四丁基磷酸二氢铵的CH3CN溶液,使溶液中H2PO-4浓度分别为1.0×10-5、1.5×10-5和3.0×10-5 mol/L,混合均匀后静置一段 时间测定荧光强度,结果如表 4所示,该受体分子测量H2PO-4的精确度较好,回收率分别为105.5%、99.8%和103.1%,可用于样品中H2PO-4的检测。
表 4
105H2PO4- in samples/(mol·L-1) 105Detected H2PO4-/(mol·L-1) RSD/% Recovery/% 1.0 1.055±0.021 1.01 105.5 1.5 1.498±0.028 0.69 99.8 3.0 3.092±0.058 1.29 103.1 3. 结论
设计合成了基于萘酰亚胺-苯并咪唑鎓的受体分子1和2,研究结果显示受体分子1和2在CH3CN溶液中均能高选择性的识别H2PO-4,可作为H2PO-4的荧光关闭型(turn-off)传感器,其中,受体分子1对H2PO-4的识别性能更好,是因为受体分子1具有咪唑2位H、吡啶N原子和萘酰亚胺O原子多种识别位点,在构型上与H2PO-4更匹配。 受体分子1与H2PO-4的结合比为1∶1,结合常数为(1.25±0.11)×105 L/mol,检出限为6.90×10-6 mol/L。 该研究结果为设计其它检测阴离子的受体分子提供了有益的参考.
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图 1 受体分子1和2的CH3CN溶液(浓度均为5.0×10-6 mol/L)中加入10倍化学计量不同阴离子后的荧光强度变化图(I0为受体分子在382 nm处的荧光发射强度,I为受体分子中加入阴离子后在382 nm处的 荧光发射强度)
Figure 1 Relative emission changes between the emission intensity of receptors 1 and 2(5.0×10-6 mol/L) in the presence of 10 stoichiometic corresponding anion(I) and the receptor alone (I0), in acetonitrile
图 2 在受体分子1和2的CH3CN溶液(浓度均为5.0×10-6 mol/L)中加入不同化学计量(0, 0.1, 0.2, 0.5, 1.0, 2.0, 1.5, 2.0, 2.5, 3.0, 3.5, 4.0, 4.5, 5.0, 6.0, 7.0, 8.0, 9.0, 10.0) H2PO- 4时的荧光光谱变化图;内插图:加入H2PO-4前后受体分子在365 nm紫外灯下的荧光变化图
Figure 2 Fluorescence titrations of receptors 1 and 2(5.0×10-6 mol/L) with different stoichiometic H2PO-4(0, 0.1, 0.2, 0.5, 1.0, 2.0, 1.5, 2.0, 2.5, 3.0, 3.5, 4.0, 4.5, 5.0, 6.0, 7.0, 8.0, 9.0, 10.0) in CH3CN; Insets:fluorescent color of receptors 1 and 2 in the absence and presence of H2PO-4 under UV lamp excited at 365 nm
表 1 受体分子1和2与阴离子的结合常数
Table 1. Binding constants of receptors 1 and 2 with various anions
Anion Receptor 1 Receptor 2 K/(L·mol-1) R2 Binding ratio K/(L·mol-1) R2 Binding ratio F- (2.33±0.02)×104 0.992 2 1:1 (4.74±0.16)×103 0.991 0 1:1 AcO- (5.21±0.04)×103 0.990 7 1:1 (4.21±0.06)×103 0.993 1 1:1 HSO4- (5.36±0.09)×103 0.995 4 1:1 (2.214±0.02)×103 0.992 2 1:1 H2PO4- (1.25±0.11)×105 0.991 7 1:1 (1.51±0.02)×104 0.990 8 1:1 表 2 受体分子1和2与H2PO-4结合后的键长参数
Table 2. Bond distances of receptors 1 and 2 with H2PO-4
Receptor 1 Receptor 2 Heavy atom distance/nm H-bond distance/nm Heavy atom distance/nm H-bond distance/nm O50——O26 0.283 3 O30——H27 0.186 7 C5——O35 0.294 7 H8——O35 0.186 2 C5——O22 0.293 4 H8——O22 0.184 9 O63——O37 0.281 0 H38——O63 0.183 3 N61——O24 0.283 1 H25——O61 0.184 5 表 3 DFT模拟计算的HOMO、LUMO和HOMO-LUMO能隙差值(HLG)
Table 3. DFT calculated HOMO, LUMO, HOMO-LUMO gap(HLG)
HOMO/eV LUMO/eV HLG/eV 1-H2PO4- -6.80 -2.95 3.85 2-H2PO4- -6.83 -2.86 3.97 表 4 基于受体分子1的CH3CN溶液中H2PO-4离子检测结果
Table 4. Determination of H2PO-4 in CH3CN using the receptor 1
105H2PO4- in samples/(mol·L-1) 105Detected H2PO4-/(mol·L-1) RSD/% Recovery/% 1.0 1.055±0.021 1.01 105.5 1.5 1.498±0.028 0.69 99.8 3.0 3.092±0.058 1.29 103.1 -
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