Citation: LI Run-dong, ZHANG Yang, LI Bing-shuo, LIU He-xin, KAI Xing-ping, YAN Zheng, YANG Tian-hua. Hydrothermal catalytic liquefaction of corn stalk for preparation of bio-oil[J]. Journal of Fuel Chemistry and Technology, 2016, 44(1): 69-75.
玉米秸秆催化液化制备生物油实验研究
English
Hydrothermal catalytic liquefaction of corn stalk for preparation of bio-oil
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Key words:
- corn stalk
- / catalyst
- / catalytic liquefaction
- / bio-oil
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随着人类对能源需求的不断增加和环保意识的增强,作为仅次于煤、石油和天然气的第四大能源,生物质能引起了人们的普遍关注[1, 2]。其中,木质纤维素类生物质分布广泛、来源丰富,是最为理想的生物质原料。中国每年的秸秆资源达6×108 t[3],而中国北方地区是玉米的主产区,每年产生大量玉米秸秆,对玉米秸秆的合理利用是满足环保和能源需求的双赢战略。水热液化技术作为最具前景的生物质能利用方式,受到了许多研究者的青睐[4-6]。
然而,通过水热液化制备的生物油与石油燃料相比具有含氧量高、热值低、黏度大和稳定性差等缺点[7],这些缺点与生物油中各种含氧化合物息息相关。因此,对生物油品质的改善极为重要。催化液化,是在生物质液化反应过程中加入催化剂,在反应过程中对自由基片段的断裂与重组进行调整,从而达到优化生物油组分,提高生物油品质的目的,是生物油提质最直接、简便、经济的途径。徐玉福等[8]以小球藻粉为原料添加CeHZSM-5催化剂在高温高压反应釜中探究水热液化最优实验条件,在最优条件下生物油产率为39.87%,热值为26.09 MJ/kg,主要成分为醇类、酯类及烃类等稳定组分。程明杨等[9]使用金属改性催化剂FeHZSM-5和NiHZSM-5对木屑进行催化液化,结果表明,负载Fe3+的分子筛具有良好的催化性能,生物油产率达到42.8%,主要成分2, 6-二叔丁基对甲酚(BHT) 含量增多,而BHT是酚类抗氧化剂,能有效防止润滑油、燃料油的酸值或黏度上升。Li等[10]对海带进行FeHZSM-5和NiHZSM-5催化液化,所得的生物油中芳香烃和长链烷烃含量增加;酚类和含氮化合物种类减少。生物油的主要成分是芳香烃、酚类、烷烃和烯烃及含氧和含氮化合物。
实验选取玉米秸秆粉末为原料,使用负载型分子筛FeHZSM-5为催化剂,对玉米秸秆进行催化液化实验,探究反应条件对催化液化产物分布的影响规律,并对生物油成分进行分析,以期为生物油组分优化提供依据。
1 实验部分
1.1 原料与试剂
实验原料:玉米秸秆取自沈阳市郊区,自然风干后用微型粉碎机粉碎后过50目筛,收集备用。玉米秸秆的元素分析、工业分析见表 1。
Proximate analysis wd/% Ultimate analysis wd/% Heating value Q/(MJ·kg-1) M A V FC C H Oa N S 5.45 5.84 74.55 14.16 41.44 5.31 52.27 0.84 0.14 12.25 a: by difference 表 1 玉米秸秆的工业分析与元素分析
Table 1. Proximate, ultimate and heating value analyses of CS material试剂:无水乙醇、丙酮和硝酸铁,均为分析纯。
催化剂的制备:实验中使用的分子筛HZSM-5载体购自天津南化催化剂有限公司,Si/Al=25。FeHZSM-5催化剂通过浸渍硝酸铁溶液制得,将一定量的HZSM-5粉末等体积浸渍于0.5 mol/L的硝酸铁溶液中,80 ℃下搅拌2 h,并在105 ℃下干燥12 h,然后在马弗炉中程序升温至500 ℃,焙烧4 h,即得到实验所需的铁负载型分子筛催化剂FeHZSM-5。
1.2 实验仪器
液化实验在带有磁力搅拌器的间歇式高温高压反应釜(烟台松岭化工) 中进行,型号为KCFD05-30。反应釜容积为500 mL,设计压力为32 MPa,最高工作温度500 ℃。采用PID温度控制仪,控制精度为±5 ℃。实验过程中的温度与压力实时数据通过连接到计算机系统的K型热电偶及压力传感器产生的信号进行相应记录。
1.3 实验过程
将15 g玉米秸秆粉末和一定量的催化剂加入反应釜内,加入150 mL去离子水,用玻璃棒搅拌均匀后,密封反应釜,用高纯氮气吹扫置换釜内空气。通过外置加热套以5.5 ℃/min加热速率加热到反应所需温度,并保持一定的反应时间,磁力搅拌器转速为150 r/min。反应结束后,去掉加热套通过风扇对反应釜进行冷却。当釜内温度降至30 ℃左右时,打开排气阀,通过排水法收集气体。然后打开反应釜,倒出水相产物及部分残渣。反应产生的大部分生物油与残渣黏合在一起,并附着在釜壁和釜内管线上。使用乙醇和丙酮先后冲洗釜壁和管线,得到有机相和残渣的混合物。将有机相经过减压抽滤(有机滤膜,孔径0.45 μm) 后,在80 ℃水浴下恒温旋转蒸发后得到生物油。从水相和有机相中分离出的残渣在105 ℃下烘干至恒重,定义为残渣。
产物转化率计算公式如下:
式中,mCS:15.00 g玉米秸秆的干基质量;mbio-oil:生物油质量;msolid:残渣质量;mgas:气体质量。wbio-oil:生物油产率;wsolid:残渣产率;wgas:气体产率;x:催化液化转化率。
1.4 生物油的分析
生物油官能团种类的分析使用美国Perkin Elmer公司的Spectrum 100傅里叶变换红外光谱仪(FT-IR),检测波长为4 000-600 cm-1,分辨率:4 cm-1,室温。
生物油化学成分分析采用气相色谱-质谱联用仪(GC-MS, Agilent 6890N/5975)。色谱条件:色谱柱为Agilent HP-5(30m×25 mm×0.25 μm);载气为高纯氦气;流量为1 mL/min,分流比50:1;加热程序:GC在初始温度60 ℃下保持3 min,然后以10 ℃/min升温至280 ℃,停留20 min。质谱条件:电离方式为EI;电子能量为70 eV;20-550 amu扫描。进样量为1 μL。化合物鉴别使用NIST数据库。
2 结果与讨论
2.1 反应温度的影响
图 1为一次实验中釜内温度和压力随时间的变化。由图 1可知,压力随着温度的变化而有规律变化,实验中釜内压力主要来自水的蒸发和反应过程产生的气体。因此,随着反应温度的升高,压力也升高。
在反应时间为30 min,催化剂含量为6.67%的条件下,考察反应温度对玉米秸秆水热液化产物分布的影响。
反应温度是影响液化产物分布的重要因素。生物质水热液化过程一般分为三个阶段:第一阶段为生物质大分子聚合物解聚成为单体;第二阶段为生物质单体通过脱水、脱羧等反应分解形成不稳定小分子活性片段;第三阶段为这些小的活性片段通过冷凝、环化和再聚合等形成新的化合物[2]。图 2为反应温度对秸秆液化产物分布的影响。由图 2可知,随着反应温度升高,气体和残渣产率呈现相反的变化趋势,气体产率逐渐增加,残渣产率逐渐减少。这主要是因为,一方面,随着温度升高生物质解聚反应进行的愈加彻底,生物质大分子在解聚的同时释放出小分子气体;另一方面,随着温度升高,二次裂解反应开始变得活跃,前一阶段生成的生物油发生裂解,裂解产生的自由基片段通过环化、缩聚等形成残渣,同时释放出部分气体,而由于气体分子的平均自由程相对较大,其气相重整为液相的概率较小[11],因此,导致气体产率增加,残渣产率先下降后趋于平稳。生物油产率在较小的范围内波动,这是因为催化剂的加入降低了反应所需的活化能,使生物质在较低的温度下已经反应充分,继续升高温度则会使液相产物不断发生分解与重聚,但最终会向着生物油产率减小、残渣产率增大的方向进行。因此,结合生物油产率及转化率,实验中玉米秸秆的最佳催化液化反应温度为340 ℃。
2.2 催化剂含量的影响
在反应温度为340 ℃,反应时间为30 min时,催化剂含量对液化产物分布的影响更为显著,具体见图 3。
由图 3可知,生物油产率与残渣产率呈现相反的变化趋势,在催化剂含量小于6.67%时,生物油产率随催化剂含量的增加而增加,在催化剂含量为6.67%时生物油产率达到最大值,为28.03%。此后,随着催化剂含量的增加,生物油产率呈现下降趋势,表明在催化剂添加量为6.67%时已经达到饱和,继续增加催化剂含量将会导致生物油二次裂解加剧,使生物油转化为气体和残渣;同时在液化过程中由木质素分解生成的含甲氧基芳香族化合物活性分子开始发生缩合和重聚形成固体残渣[12]。实验过程中还发现,当催化剂含量为13.33%时,生物油变得极为黏稠,并出现结焦现象,流动性较差,表明生物油发生了严重的缩聚反应,导致生物油中大分子量化合物增加。因此,当催化剂含量为6.67%时,是最佳催化剂添加量。
2.3 反应时间的影响
在反应温度为340 ℃,催化剂含量为6.67%时,反应时间对秸秆液化产物分布的影响见图 4。由图 4可见,随着反应时间的延长,生物油的产率在经历了缓慢的上升后开始显著下降,这是因为,在10-30 min,随着反应时间的延长,一方面,反应进行的愈加彻底;另一方面,催化剂的存在加快了反应速率,使反应在较短的时间内基本完成,因此,随着反应时间的延长生物油产率呈现缓慢延长趋势,当反应时间达30 min时,生物质的断裂、解聚等一次反应基本结束,生物油产率达到最大值。继续增加反应时间,二次反应开始占据主导地位,生物油分子发生分解、断裂和再缩聚等,聚合成残渣的同时释放出小分子气体,因此,生物油产率降低,残渣得率增加。综合比较,认为最佳反应时间为30 min。
2.4 生物油的分析
2.4.3 生物油的沸点分析
生物油的碳数分布图最早是由Murata等提出,由于化合物中碳的个数对应于特定组成的碳氢化合物的沸点范围,因此, 可用生物油化合物中碳数来表征生物油中化合物沸点的高低,也就是产物挥发性分布[15],同时,也可反映出生物油中化合物分子量的相对大小。图 7为添加催化剂前后生物油的C-NP图。由图 7可知,未添加催化剂的生物油中化合物主要以C8和C19为主,而添加催化剂后主要以C8和C18为主,尤其是C18含量最高,达21.05%,而C18对应的化合物是硬脂酸和棕榈酸乙酯。
2.4.1 生物油的FT-IR分析
催化剂的添加不仅影响水热液化的反应速率,更重要的是能够改变生物油的成分组成,影响生物油中各种官能团。添加催化剂前后生物油的红外光谱谱图见图 5。由图 5可知,生物油的红外光谱谱图有相似的谱峰归属,这表明生物油中所含有的官能团类型基本相同,但官能团的红外光谱强度不同,说明其相对含量不同,特别是在指纹区1 500-400 cm-1,表明添加催化剂前后生物油中化合物成分有较大差异。
在3 600-3 200 cm-1处,两种样品都具有一个宽而强的吸收峰,这主要是生物油中酚类和醇类分子间缔合的O-H伸缩振动吸收峰和N-H振动吸收峰[13]。在1 086和1 046 cm-1处是醇分子中C-O键的伸缩振动吸收峰。和未添加催化剂的生物油相比,添加FeHZSM-5催化剂时,生物油在该处的吸收峰有所减弱,表明添加催化剂后生物油中酚和醇含量减少,这在生物油GC-MS分析结果中得到验证。生物油在2 980-2 850 cm-1的吸收峰代表生物油中C、H形成的C-Hn键的伸缩振动,两种条件下生物油在此区域的峰强基本一致。在1 686 cm-1的C=O伸缩振动吸收峰和1 607 cm-1处的C-C伸缩振动吸收峰,较未添加催化剂时有所减弱,表明生物油中酮类化合物有所减少。1 515和1 607 cm-1处是木质素中芳香环振动的特征谱带。
2.4.2 生物油的GC-MS分析
表 2为温度为340 ℃,反应时间为30 min,催化剂含量为6.67%时生物油的主要成分及其相对含量。由表 2可知,生物油中包含近60种化合物,大部分为各种各样的链状或环状含氧化合物以及部分碳氢化合物。生物油中含量最多的是硬脂酸和棕榈酸乙酯,含量分别达10.78%和8.71%,且酸和酯主要以长链形式存在。生物油中还含有一些酮类化合物,这些酮主要是环戊酮类。此外,生物油中也包含着许多甲氧基芳香族化合物以及酚类化合物,如4-乙基-2-甲氧基苯酚和4-乙基苯酚,这些化合物主要是来自玉米秸秆中木质素的分解。
RT. M.F. Compound Area /% Time t/min M.F. Compound Area /% 4.602 C6H8O 2-cyclopente n-1-one, 2-methyl- 0.42 20.436 C19H38 1-nonadecene 1.10 6.428 C6H8O 2-cyclopenten-1-one, 3-methyl- 0.28 20.972 C11H13N 1H-indole, 5, 6, 7-trimethyl- 2.02 9.086 C6H6O phenol 0.77 21.383 C11H13N 2, 3, 7-trimethylindole 1.92 9.870 C7H10O 2-cyclopenten-1-one, 0.58 21.851 C12H15N 1, 2, 3, 7-tetramethylindole 0.89 2, 3-dimethyl- 11.391 C8H12O 2-cyclopenten-1-one, 0.28 22.798 C19H38 1-nonadecene 1.11 2, 3, 4-trimethyl- 12.375 C8H12O 2-cyclopenten-1-one, 2-methyl- 0.40 23.247 C13H26 cyclohexane, 2-butyl- 0.96 1, 1, 3-trimethyl- 12.595 C7H8O2 phenol, 2-methoxy- 0.68 23.362 C15H32O 1-dodecanol, 3, 7, 11-trimethyl- 1.58 12.796 C8H12O 2-cyclopenten-1-one, 0.74 24.902 C19H38 1-nonadecene 2.06 3, 5, 5-trimethyl- 13.475 C7H8O phenol, 4-methyl- 0.86 24.997 C17H34O2 hexadecanoic acid, methyl ester 0.86 13.733 C8H12O 2-cyclopenten-1-one, 0.80 25.102 C16H22O4 dibutyl phthalate 1.81 2, 3, 4-trimethyl- 14.881 C8H10O phenol, 3-ethyl- 0.48 25.227 C16H30O2 9-hexadecenoic acid 2.01 15.072 C8H10O phenol, 2, 5-dimethyl- 0.59 25.351 C16H32O2 n-hexadecanoic acid 2.65 15.321 C8H10O phenol, 4-ethyl- 6.63 25.600 C18H36O2 hexadecanoic acid, ethyl ester 8.71 15.684 C9H10N2 1H-benzimidazole, 5, 6-dimethyl- 0.84 25.762 C19H36O2 10-octadecenoic acid, methyl ester 1.71 15.789 C10H10O benzofuran, 4, 7-dimethyl- 0.42 26.728 C19H36O2 16-octadecenoic acid, methyl ester 1.17 15.866 C10H10O benzofuran, 4, 7-dimethyl- 1.40 26.891 C19H38O2 heptadecanoic acid, 1.09 16-methyl-, methyl ester 16.621 C9H12O phenol, 2, 4, 6-trimethyl- 1.12 26.996 C18H34O2 oleic acid 1.09 16.679 C9H12O phenol, 3-(1-methylethyl)- 1.12 27.244 C18H36O2 octadecanoic acid 10.78 16.879 C9H8O 1H-inden-1-one, 2, 3-dihydro- 0.71 27.598 C20H40O2 octadecanoic acid, ethyl ester 4.51 17.032 C9H12O2 phenol, 4-ethyl-2-methoxy- 2.84 27.694 C17H36O 1-hexadecanol, 2-methyl- 1.39 17.501 C10H10O 1H-inden-1-one, 2, 0.65 27.780 C26H54 octadecane, 1.15 3-dihydro-3-methyl- 3-ethyl-5-(2-ethylbutyl)- 17.606 C11H12O 1H-inden-1-one, 2, 1.02 28.487 C19H38O3 octadecanoic acid, 1.05 3-dihydro-3, 3-dimethyl- 4-hydroxy-, methyl ester 18.199 C8H10O3 phenol, 2, 6-dimethoxy- 1.85 28.545 C22H44 1-docosene 1.05 18.476 C10H14O2 phenol, 2-methoxy-4-propyl- 1.08 28.621 C16H34O 1-decanol, 2-hexyl- 1.17 19.021 C12H14O 1(2H)-naphthalenone, 1.32 29.377 C26H52 9-hexacosene 0.94 5-ethyl-3, 4-dihydro- 19.384 C11H16O2 3-tert-butyl-4-hydroxyanisole 0.80 30.161 C22H44 1-docosene 0.83 19.566 C9H12O3 phenol, 4-methoxy- 2.17 32.513 C30H50 squalene 0.86 3-(methoxymethyl)- 20.149 C10H11N indolizine, 2, 5-dimethyl- 1.56 33.928 C29H48 stigmasta-4, 22-diene 0.37 表 2 生物油主要组分的GC-MS分析
Table 2. Major chemical compositions of bio-oil由生物油的GC-MS分析结果可看出,生物油中包含的化合物种类繁多,成分复杂,但是决定化合物性质的主要是其所含有的官能团,因此,为方便分析,将生物油的成分按官能团的类型分为酚类、醇类、酮类、酸类、酯类以及烃类。
图 6为未添加催化剂和添加FeHZSM-5催化剂后生物油中各类物质的相对含量。由图 6可知,催化剂对生物油组分有显著影响。虽然不论添加催化剂与否,生物油中含量最多的都是酚类化合物,但未添加催化剂时生物油中甲氧基酚类占14.51%,而添加催化剂时生物油中甲氧基酚类含量为9.42%,表明催化剂促进了酚类化合物的脱甲氧基反应。此外添加催化剂后生物油中酮类化合物含量显著降低,从13.90%降低到4.64%,这可能是因为催化剂的添加促进了生物油中酮类化合物的脱羰基反应,同时酮类化合物进一步裂解,酯化形成酯类,酸及醇类等物质。因此,生物油中酯类、烃类和酸类化合物明显增加,分别由未添加催化剂的7.65%、6.02%和8.71%增加到20.91%、10.43%和16.53%。羰基是不稳定基团,羰基化合物的存在会引起复杂的化学反应,生成缩醛或缩酮以及发生羟醛缩合反应[14],因此,酮类化合物的减少在一定程度上增加了生物油的稳定性。
3 结论
催化剂的加入使反应活化能降低。反应温度对玉米秸秆生物油产率变化的影响较小,但温度变化会影响生物油成分的组成,因此,综合生物油产率和成分,认为340 ℃是玉米秸秆催化液化的最佳反应温度。
催化剂含量对生物油产率有明显的影响,随着催化剂含量的增加,生物油产率呈现抛物线变化趋势,当催化剂含量为6.67%时,生物油产率达到极大值。
反应时间对生物油产率的影响也较为显著,随着反应时间的延长,生物油产率先增加后下降,在反应时间为30 min时生物油产率达到极值。因此,在体积为500 mL的高温高压反应釜中,玉米秸秆最佳催化液化反应条件是反应温度为340 ℃,玉米秸秆15 g,催化剂含量为6.67%,反应时间30 min,在此条件下生物油产率为28.03%,催化液化整体转化率为81.73%。生物油的热值为30.08 MJ/kg。
生物油的GC-MS分析显示,在最佳催化液化条件下生物油的主要成分是酚类和酯类,含量分别为20.99%和20.91%,相比于未添加催化剂条件下的生物油,酯类、烃类等有益组分增加,酮类等不稳定组分减少。
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表 1 玉米秸秆的工业分析与元素分析
Table 1. Proximate, ultimate and heating value analyses of CS material
Proximate analysis wd/% Ultimate analysis wd/% Heating value Q/(MJ·kg-1) M A V FC C H Oa N S 5.45 5.84 74.55 14.16 41.44 5.31 52.27 0.84 0.14 12.25 a: by difference 表 2 生物油主要组分的GC-MS分析
Table 2. Major chemical compositions of bio-oil
RT. M.F. Compound Area /% Time t/min M.F. Compound Area /% 4.602 C6H8O 2-cyclopente n-1-one, 2-methyl- 0.42 20.436 C19H38 1-nonadecene 1.10 6.428 C6H8O 2-cyclopenten-1-one, 3-methyl- 0.28 20.972 C11H13N 1H-indole, 5, 6, 7-trimethyl- 2.02 9.086 C6H6O phenol 0.77 21.383 C11H13N 2, 3, 7-trimethylindole 1.92 9.870 C7H10O 2-cyclopenten-1-one, 0.58 21.851 C12H15N 1, 2, 3, 7-tetramethylindole 0.89 2, 3-dimethyl- 11.391 C8H12O 2-cyclopenten-1-one, 0.28 22.798 C19H38 1-nonadecene 1.11 2, 3, 4-trimethyl- 12.375 C8H12O 2-cyclopenten-1-one, 2-methyl- 0.40 23.247 C13H26 cyclohexane, 2-butyl- 0.96 1, 1, 3-trimethyl- 12.595 C7H8O2 phenol, 2-methoxy- 0.68 23.362 C15H32O 1-dodecanol, 3, 7, 11-trimethyl- 1.58 12.796 C8H12O 2-cyclopenten-1-one, 0.74 24.902 C19H38 1-nonadecene 2.06 3, 5, 5-trimethyl- 13.475 C7H8O phenol, 4-methyl- 0.86 24.997 C17H34O2 hexadecanoic acid, methyl ester 0.86 13.733 C8H12O 2-cyclopenten-1-one, 0.80 25.102 C16H22O4 dibutyl phthalate 1.81 2, 3, 4-trimethyl- 14.881 C8H10O phenol, 3-ethyl- 0.48 25.227 C16H30O2 9-hexadecenoic acid 2.01 15.072 C8H10O phenol, 2, 5-dimethyl- 0.59 25.351 C16H32O2 n-hexadecanoic acid 2.65 15.321 C8H10O phenol, 4-ethyl- 6.63 25.600 C18H36O2 hexadecanoic acid, ethyl ester 8.71 15.684 C9H10N2 1H-benzimidazole, 5, 6-dimethyl- 0.84 25.762 C19H36O2 10-octadecenoic acid, methyl ester 1.71 15.789 C10H10O benzofuran, 4, 7-dimethyl- 0.42 26.728 C19H36O2 16-octadecenoic acid, methyl ester 1.17 15.866 C10H10O benzofuran, 4, 7-dimethyl- 1.40 26.891 C19H38O2 heptadecanoic acid, 1.09 16-methyl-, methyl ester 16.621 C9H12O phenol, 2, 4, 6-trimethyl- 1.12 26.996 C18H34O2 oleic acid 1.09 16.679 C9H12O phenol, 3-(1-methylethyl)- 1.12 27.244 C18H36O2 octadecanoic acid 10.78 16.879 C9H8O 1H-inden-1-one, 2, 3-dihydro- 0.71 27.598 C20H40O2 octadecanoic acid, ethyl ester 4.51 17.032 C9H12O2 phenol, 4-ethyl-2-methoxy- 2.84 27.694 C17H36O 1-hexadecanol, 2-methyl- 1.39 17.501 C10H10O 1H-inden-1-one, 2, 0.65 27.780 C26H54 octadecane, 1.15 3-dihydro-3-methyl- 3-ethyl-5-(2-ethylbutyl)- 17.606 C11H12O 1H-inden-1-one, 2, 1.02 28.487 C19H38O3 octadecanoic acid, 1.05 3-dihydro-3, 3-dimethyl- 4-hydroxy-, methyl ester 18.199 C8H10O3 phenol, 2, 6-dimethoxy- 1.85 28.545 C22H44 1-docosene 1.05 18.476 C10H14O2 phenol, 2-methoxy-4-propyl- 1.08 28.621 C16H34O 1-decanol, 2-hexyl- 1.17 19.021 C12H14O 1(2H)-naphthalenone, 1.32 29.377 C26H52 9-hexacosene 0.94 5-ethyl-3, 4-dihydro- 19.384 C11H16O2 3-tert-butyl-4-hydroxyanisole 0.80 30.161 C22H44 1-docosene 0.83 19.566 C9H12O3 phenol, 4-methoxy- 2.17 32.513 C30H50 squalene 0.86 3-(methoxymethyl)- 20.149 C10H11N indolizine, 2, 5-dimethyl- 1.56 33.928 C29H48 stigmasta-4, 22-diene 0.37 -
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